❶ 小白鼠采血三種方法的優缺點，謝謝！
1.采血部位：眼眶采血
采血方法：將鼠固定在實驗台邊緣，左手抓緊鼠頸部皮膚固定頭部，並輕輕向下壓迫頸兩側，使眼球充血。用事先准備好的10號金屬針頭頂端(針尖斜面朝內)垂直插入內眥並向眼底方向轉動以便切開靜脈叢，血液便會連續不斷地滴入采血管。用此法大約可取3~5mL血液。取血完畢，立刻用脫脂棉壓迫止血。
優點：眼眶後靜脈叢采血法方法簡單，便於掌握。血流較快，采血量多，能在較短時間內採到3~5mL血。傷口較小，癒合較快。成功率高，死亡率低。
缺點：不能避免組織液的混入，對於血樣要求較高的研究應謹慎使用。另外，多次使用易引起大鼠的感染。對後續試驗結果存在一定影響。
2.摘眼采血：鼠可以眼球取血，需要多多練習。一般來說，可以三人配合取血。取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉大鼠的胡須（胡須過長，血液滴下的時候容易沾在胡須上，既浪費，又造成溶血，故應剪掉）。
所需器械：眼科小剪、眼科彎鑷、止血鉗。
一人抓大鼠並用眼科彎鑷摘眼球，一人用止血鉗夾住大鼠的嘴部以固定大鼠頭部，另一個人拿試管接血。
大鼠在掙扎過程中，很容易導致血液丟失，因此固定頭部很重要，否則只有眼看著血液亂飛，卻不入試管。摘眼球也需要技巧，否則眼球摘下來了，而血液卻不流出來，應多多練習
優缺點不太清楚啊，只知道我一個學長摘眼球的時候被咬了一口，挺殘忍的
3.采血部位：心臟取血（其實這個一般用在家兔）
采血方法：將實驗動物做仰卧有助手固定，術者在其左前肢腋下處剪毛及消毒。在胸部心臟跳動最明顯處，用一寸長的12好針頭直刺心臟，感到以針頭跳動或有血液內流動時。即可抽血。一次可采血15-20ml
優點：抽血快，血液不易凝集，心區面積大, 進針准確性較高, 易一針見血, 且采血量能滿足大量試驗需要
缺點：心臟損傷較大，難以迅速癒合，不利於短期連續采血。
3『.采血部位：心臟采血（剪開皮膚）
采血方法：從胸部正中剪開皮膚2.0~2.5cm。暴露肋骨和肌肉。左手拇指和食指從胸廓兩則擠壓，以確定心臟的位置，此時可觸摸到心尖的搏動。然後拇指松開，右手持注射器（7號針頭），在胸骨左側（對操作者來說是右側），離胸骨0.5cm的第三肋和第四肋之間進針，並使針頭與肋骨側成90°左右的夾角。進針的深度為2cm左右（根據動物大小而定）。進針時用左手拇指和食指夾住心臟博動的位置，使之固定，進針要快。若針頭進入心室，由於壓力的原因血液會自動進入針管，抽起來很容易。若進針過深，就一邊回退一邊抽。若進針過淺，可感覺到針頭隨心臟的博動而搖動，這時可再進深一些。
優點：采血量大，樣本質量可靠。
缺點 ：不能保證完全是動脈血，因進針的方向或操作問題亦可采出靜脈血。另外，應用本采血方法後，有部分鼠可造成死亡，因此不適合對動靜脈血有嚴格要求的實驗研究，亦不適用於試驗中間過程的采樣。
❷ 請問小鼠斷頭取血法最多可以取多少血可以用1.5ml的管子接著嗎會不會噴射出去
看小鼠年齡，成年的話大約可以取1ml左右。
不過這種取血法不好，容易混入唾液，毛等等。
看這個資料
1）尾尖取血：當所需血量很少時採用本法。固定動物並歷出鼠尾，將鼠尾在45℃溫水中浸泡數分鍾，也可用二甲苯等化學葯物塗擦，使局新血管擴張。將鼠尾擦乾，剪去尾尖，血自尾尖流出，讓血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需間隔一定時間，多次採取鼠尾尖部血液，每次采血時，將鼠尾剪去很小一段，取血後，先用棉球壓迫止血並立即用6％液體火棉膠塗於尾巴傷口處，使傷口外結一層火棉膠薄膜，保護傷口。也可採用切割尾靜脈的方法采血，三根尾勢脈可交替切割，並自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割後用棉球壓迫止血。這種采血方法在大鼠進行較好，可以較長的間隔時間連續取血，進行血常規檢查。
（2）眼眶後靜脈叢取血：當需中等量的血液，而又需避免動物死亡時採用此法。用左手固定鼠，盡量捏緊頭部皮膚，使頭固定，並輕輕向下壓迫頸部兩側，引起頭部靜脈血液迴流困難，使眼球充分外突（示眼眶後靜脈叢充血），右手持毛細玻璃管，沿內眥眼眶後壁向喉頭方向旋轉刺入。刺入深度小鼠2～3mm，大鼠4～5mm。當感到有阻力時再稍後退，保持水平位，稍加吸引，由於血壓的關系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量後，撥出毛細管。若手法恰當，小鼠約可采血0.2～0.3ml，大鼠約可采血0.4～0.6ml。
（3）斷頭取血：當需要較大量的血液，而又不需繼續保存動物生命時採用此法。左手捉持動物，使其頭略向下傾，右手持剪刀猛力剪掉鼠頭，讓血液滴入盛器。小鼠可采血0.8～1.0ml，大鼠可採用5～8ml。
（4）眶動脈和眶靜脈取血：此法既能採取較大量的血液，又可避免斷頭取血法中因組織液的混入導致溶血的現象，現常取代斷頭取血法。先使動物眼球突出充血後，以彎頭眼科鑷迅速鉗取眼球，並將鼠倒置，頭向下，眼眶內很快流出血液，讓血液滴入盛器，直至不流為止。此法由於取血過程中動物未死，心臟不斷在跳動，因此取血量比斷頭法多，一般可取鼠體重4～5％的血液量，是一種較好的取血方法。
（5）心臟取血：動物仰卧固定在固定板上，剪去心前區部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮膚。在左側第3～4肋間，用左手食指摸到心搏處，右手取連有4～5號針頭的注射器，選擇心搏最強處穿刺，當針刺入心臟時，血液由於心臟跳動的力量自動進人注射器。此法要求實驗者掌握以下要點：要迅速而直接插入心臟，否則，心臟將從針尖處滑脫；如第一次沒刺准，將針頭抽出重刺，不要在心臟周圍亂探，以免損傷心、肺；要緩慢而穩定的抽吸，否則，太多的真空反而使心臟塌陷。若不需保留動物生命時，也可麻*醉後切開動物胸部，將注射器直接刺人心臟抽吸血液。
（6）大血管取血：大、小鼠還可從頸動、靜脈，股動、靜脈和腋下動、靜脈取血，在這些部位取血均需麻*醉後固定動物，然後作動、靜脈分離手術，使其暴露清楚後，用注射器沿大血管平行刺入（或直接用剪刀剪斷大血管），抽取所需血量。切斷動脈時，要防止血液噴濺。
❸ 請問大鼠斷尾取血如何操作
擠啊擠……擠啊擠……就這樣。這樣子採到的血可以用毛細管吸，做細胞分析足夠，但是要用血清的話……好像還是不夠。
也有用5ml注射器從尾靜脈抽取的，不知道效果如何。
我自己要做血清的。我用的方法是：股靜脈抽取。可以順利抽到好多血……可是老鼠它也……掛了……接著就做心臟灌注……取標本……如果你不介意老鼠的死活，或者反正要取標本，就乾脆像我這樣。
❹ 金黃地鼠怎麼采血
1.尾尖取血：間斷尾巴進行取血。注意，剪下來一點就可以，小鼠1-2mm，大鼠3-5mm，流出血液收集即可。過程中可以捋尾巴。血液可以用於塗片，試紙檢測血糖等。
2.眼眶後靜脈叢采血：刺破眼眶靜脈叢進行采血的方法。一隻手保定老鼠，食指拇指輕輕按壓頸部兩側，導致眼眶後靜脈充血，用針以45°角從內眼角刺入，並向下旋轉；血液將流出。此法可短時間內重復采血，小鼠一次0.2-0.3 mL，大鼠0.5-1mL.
3.摘眼球取血：此采血方法致死。小鼠倒置5s後，保定，用鑷子摘取眼球，血液從眼眶中流入EP管，注意，最好不要反復用 鑷子刺眼眶，即便流出血液，也溶液產生溶血現象。一般麻醉後會收集更多血液，在不影響實驗結果的前提下，推薦使用。
4.心臟取血：由於心室不好掌握，故而一般不推薦活體心臟取血。常解剖後或麻醉後心臟取血。保定老鼠後，針成45°角斜向前刺入心臟（心臟劇烈跳動，肉眼可見心臟跳動的位置），吸取血液。易有溶血反應。
5.此外還有斷頭取血，腹主動脈采血和頸動脈或股動靜脈或腋下動靜脈取血。其中斷頭取血量大，但是不推薦，容易產生心理陰影。
金黃地鼠（Golden hamster;Mesocricetus auratus）又稱敘利亞地鼠、金毛鼠、熊仔鼠，金絲熊，金黃色，體重150克，染色體22對。1930年自中東敘利亞引進，各實驗室飼養有所不同，但遺傳上比較一致，無大變異。應用最多，原產於敘利亞、黎巴嫩、以色列等地，於1938年引入美國後才正式成為寵物。主要分布在東歐、南歐和亞洲的少數地區。
❺ 大鼠取血做葯代動力學，哪種取血方法較好
一般可以插管取血，做葯代動力學基本上都可以的，比如頸動脈，頸靜脈，也可以尾靜脈采血，主要看你的實驗。
❻ 對實驗動物采血的要求
1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：將小鼠抓牢固定，用拇指和食指將眼部皮膚扒開，使眼球充分突出，眼窩內眥處為眼靜脈竇。將毛細管由此刺入，捻轉，輕輕外提，使血液充滿毛細管，采血後用一塊干紗布將眼合上數分鍾以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠為0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定動物，將尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然後自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需較多血也可先將尾浸於近50℃的熱水中，再剪去尾尖。采血後用膠布包紮尾尖進行壓迫止血。由於鼠血凝集快，需要全血應事先置抗凝劑於采血管中，如用血球懸液，應立即與生理鹽水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）斷頭取血：斷頭時，左手抓鼠，右手持剪刀於頸部迅速剪掉鼠頭，立即將鼠頸向下，血液即可流入已准備好的容器中
（4）腹主動脈采血：將動物麻醉，仰卧固定，從腹中線切開皮膚，暴露腹主動脈，用注射器抽取血液。
（5）股動（靜）脈采血：將動物麻醉固定後，進行一側腹股溝動、靜脈分離手術，血管下方分別穿一根絲線，左手提起血管，右手持注射器將針平行刺入血管內取血。
（6）心臟采血：動物麻醉後，仰卧固定於鼠板上，在左胸側第三、四肋間，用左手食指觸摸到心搏動處，右手持注射器垂直刺入心臟，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。
2.家兔采血
（1）耳中央動脈采血：將兔固定後，在兔耳中央有一條粗而鮮艷的中央動脈。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央動脈末端向心方向刺入動脈，慢慢回抽針芯，動脈血立即進入針筒，一次可取血15 mL。
（2）耳緣靜脈采血：拔去耳緣部被毛，用燈泡照射加熱耳朵或以75%酒精塗擦局部，使靜脈擴張，再用石蠟油塗擦耳緣，防止血液凝固。耳受熱後用小血管夾夾緊耳根部，用粗號針頭逆靜脈迴流方向刺破靜脈或用刀片切開靜脈，血液可自動流出，一般可采血2～3mL。取血後棉球壓迫止血。
（3）心臟采血：操作同鼠類。兔一次最多采血25mL。
（4）股靜脈、頸靜脈采血：做股靜脈、頸靜脈分離術，然後采血。
❼ 求助：大鼠舌下靜脈取血失敗，原因是什麼
目的探討一種可以多次,大量,比較安全的大鼠采血的方法.方法大鼠乙醚 麻醉後,用真空采血管舌 下靜脈取血.結果舌下靜脈取血可以採到 2～3ml 左右的血.結論舌下靜脈取血為 大鼠的首選采血方式. 【關鍵詞】大鼠g-T 靜脈采血 為了滿足試驗的要求,經常對大鼠進行多次采血, 且要求對大鼠本身損傷要小,每次抽血的量還要足夠. 根據這個要求現介紹一種新的大鼠采血方法——舌下 靜脈采血.筆者通過這種方法對300 只大鼠進行了多 次采血.發現這種方法可以滿足在大鼠實驗中多次,取 血量大且對大鼠的影響比較小.現報告如下. 材料與步驟1.1 准備器械蒸發皿(直徑20cm),止血鉗兩把,乙 醚,大鼠固定板,采血管,采血針,棉球. 1.2 實驗動物遠交群(SD)大鼠300 只,雄性,體質 量300g 左右. 1.3 步驟 1.3.1 麻醉先用棉球蘸取乙醚放入蒸發皿中,再把 大鼠投入蒸發皿中,蓋嚴皿蓋. 1.3.2 取血大約3～5min 大鼠被麻醉,取大鼠仰卧, 將四肢及上齒固定於大鼠板上.助手兩手各持一把止 血鉗,左手持止血鉗夾住大鼠的下齒並上提,使舌漏出, 右手持止血鉗夾住鼠舌並拉出.這時操作者可以清楚 地看到大鼠舌下的兩條舌下靜脈,持采血針與舌面呈 l0.夾角插入舌下靜脈,見有回血時把采血針的另一端 插入采血管.血液因負壓的抽吸作用快速地被抽人管 內.取血的多少可以根據實驗的要求來定.一般可取 2～3ml,據筆者觀察此量對大鼠影響不大. 1.3.3 止血將針頭拔出後用棉簽壓住進針處,助手 松開止血鉗,按壓片刻,把大鼠取下. 注意事項要求采血環境光線充足,室溫不能太低,一般高於 20.,如果室溫太低,大鼠舌下靜脈收縮,勢必造成進針 困難;麻醉深度要適宜,一般大鼠跌倒且眼睛半睜半閉 時效果最好.麻醉過淺時大鼠在采血過程中易蘇醒,固 定鼠舌困難,采血針易穿出靜脈;麻醉過深時特別是有 基礎疾病的大鼠易死亡.夾持鼠舌的止血鉗應是無齒 鉗或在有齒鉗上套一節軟塑料管,這樣可以減少對鼠舌 的損傷;為避免穿刺部位大量出血,進針的部位可以選 擇舌下靜脈旁開1mm 的位置,然後再調整方向插入舌 下靜脈. 討論現今常用的大鼠取血方法有尾部取血,心臟取血, 內眥取血,斷頭取血,腹主動脈取血等J.但這些取 血方法都存在一定的弊端,特別是在實驗中對大鼠要求 安全大量反復取血時,這些方法就難以滿足實驗的要 求.其中鼠尾采血量較少,僅適用於做白細胞計數或血 紅蛋白檢查,對於血清指標的檢測則不適用].心臟采 血時,如果操作熟練可以多次取血,但從大鼠心臟取血 要觸摸到心跳明顯處進針,其難點是大鼠心臟小,心搏 快,進針准確部位及深淺不易掌握J,易造成心包積血 而至大鼠死亡.斷頭采血法雖能取到較多的血量,但極 易被污染,按此法獲取的血液中大多混有少量組織液和 被毛,可能影響實驗檢測結果,最大的缺陷是只能取一 次血.內眥取血則取血量與操作者技術熟練程度有關, 取血量不易控制,多次采血後容易感染.本方法便可彌 補以上幾種方法的不足,通過對300 只大鼠反復的采血 發現該方法的具有以下優點:對大鼠損傷小,操作結 束大鼠便清醒,即可進食飲水.除采血後鼠舌稍有水腫 外無其他損傷.這樣可以減少採血對試驗本身的影響. 可以反復采血,筆者發現抽血後大鼠的舌下靜脈在很 短的時間內便可修復.抽血量較大,一般一次可以抽 到2～3ml 的血液,筆者曾試驗最多可以抽到7rrIl,大鼠 仍可存活.所採的標本不受污染.通過這個試驗我 們認為,只要按要領操作,該法取血較方便簡單,易完 成,可以滿足試驗取血的要求.舌下靜脈取血應為大鼠 采血的首選方法,值得推廣. 參考文獻 [1]VanHH,BaumansV,BrandtCJ,eta1.OrbitalsinusBloodamplingin :theinfluenceofech- niqueandexpertise[J].LaboratoryAnimals,
❽ 大鼠取血方法
腹主動脈采血，眼眶采血，頸動脈采血，尾靜脈采血等
❾ 動物抽血抽什麼部位
大型動物，如牛馬可以抽頸下靜脈血，雞鴨可以抽翅膀下血管