标本留取方法不正确的原因分析

1. 如何正确留取痰培养标本

留取痰样本步骤：

1、以清晨的时间作为留取痰时间。

2、为了减少口腔常居菌的污染，先用清水漱口后再从气管深部咳出痰液（并非唾液）吐入无菌容器内。

3、用气管穿刺法来进行对厌氧菌的培养。

4、痰液留取应立即送去检查，避免污染。

5、当检查结核分枝杆菌时，为了提高阳性率应收集24小时内各时间段的痰液。

(1)标本留取方法不正确的原因分析扩展阅读：

留取痰样本的注意事项：

1、由于咳痰标本常受到口咽部定居细菌的污染，分离得到的细菌往往不能真正代表下呼吸道感染的病原菌，应密切结合临床进行分析，必要时进行多次培养。

2、痰液的细胞学筛选：将痰液直接涂片后光学显微镜检查，每低倍视野鳞状上皮细胞小于10个，白细胞大于25个，或鳞状上皮细胞：白细胞< 1：2.5，可认为痰液来源于下呼吸道，即为合格痰标本。

3、由于痰的非均质性，定量培养之前需先将标本液化和匀化。

4、采样前使用过抗菌药物者，检测到的感染菌浓度降低，可导致假阴性结果。

2. 如何正确采集血培养标本

血标本的留取采取准确的抽血方法是保证精确评价患者kt/v
的前提。根据患者血管通路及抽血时间等的不同，操作规程如下：
（1）透前抽血
1）动静脉内瘘者：于透析开始前从静脉端内瘘穿刺针处直接抽血。
2）深静脉置管者：于透前先抽取10
ml
血液并丢弃后，再抽血样送检。避免血液标本被肝素封管溶液等稀释。
（2）透后抽血：为排除透析及透后尿素反弹等因素影响血尿素水平，要求在透析将结束时，采取如下抽血方法：
1)
方法1：首先设定超滤速度为0，然后减慢血流速度至50
ml/min
维持10
秒钟，停止血泵，于20
秒钟内从动脉端抽取血标本。或首先设定超滤速度为0，然后减慢血流速度至100
ml/min，15～30
秒钟后从动脉端抽取血标本。
2)
方法2：首先设定超滤速度为0，然后将透析液设置为旁路，血流仍以正常速度运转3～5
min
后，从血路管任何部位抽取血标本。

3. 血标本采集存在的问题应采取哪些防范措施

楼主，你好~~

1 标本容器的选择不当

不同的检验标本需要不同的检验容器。采样所用的容器是否恰当是直接影响检验结果的因素之一。常见的使用容器不当有以下情况：血清标本使用有抗凝剂的试管；全血标本使用干燥试管；血培养标本使用未经消毒的，密封不严的培养瓶或不按无菌技术操作造成容器污染而导致杂菌生长，培养失败。这些都是由于标本容器使用不当人为造成的错误。因此，根据不同的检验目的选择标本容器，必须按要求进行采集和使用。同时抽取几项检验血标本时，一般注入容器的顺序为：血培养瓶，抗凝管，干燥试管。动作应迅速准确。
2 采血的时机不当

血液中的很多成分易受饮食影响。血标本做生化检验，应在病人空腹时采取。但某些病例的空腹血也可使检验结果受到影响。常见原因是：取血前一天晚上病人大量饮酒或半夜加餐，均会使空腹血待测指标发生变化。取血前使用药物也会影响检验结果，在临床上常常遇到病人血糖浓度很低，可病人一般情况良好，调查发现病人输入大量维生素c，使血糖测定结果偏低；做细菌培养，在使用抗生素之后留取标本，会使培养阳性率降低。因此护士要根据检验内容，事先通知病人，向病人交代清楚有关的注意事项，严格掌握标本采集的适宜时机。
3 采血部位不当

临床上有个别护士贪图方便，直接从输液的针头上接上注射器抽血，或静脉点滴时从同一血管近心端采血标本，使检验标本含有大量新输入的液体；血气分析标本取静脉血送检；这些都会使检验结果与病人病情不符，因此对输液输血病人，采集血标本时应在对侧肢体采取。血气分析标本应采取动脉血。
4 采血量不当

取血时要根据不同的检验目的，选择不同的抗凝剂试管。不同的抗凝剂试管，要求的采血量不同，要注意抗凝剂与血液要有一定比例，不能过多过少，并将血液与抗凝剂轻轻摇匀。血抗凝剂过多，易造成血液稀释，结果偏低，样品渗透压改变，细胞形态发生改变。抗凝剂过少或与血液未混匀，均可出现血液凝固或出现肉眼看不见的小凝块，而影响检测结果的准确性，往往给临床医生带来假象，延误了诊断和治疗。
5 采血的方法不当

采集血标本所用方法可直接造成血液成分的变化，如抽血前止血带在病人臂上缚的时间过长或过紧，都会造成血液成分的变化。对于一些采血困难，缚止血带过长的病人，可以在针头刺入静脉后的短时间内放松止血带，等待数分钟再抽血。气体，易挥发物质，ph值等测定时，可采用一些特殊的方法。如：注射器中事先装有灭菌的抗凝剂，取血后立即将注射器针头斜面刺入橡皮塞中，尽量避免血液空气接触而影响血液成分含量或其ph值。血气标本采动脉血时最好是血液自动流入注射器内。另外，采血方法不当常可导致标本溶血而影响和干扰检测项目。红细胞内液的某些化学成分与血清浓度不同，红细胞内液浓度高时，溶血导致血浆中浓度增高，反之可产生不同的稀释作用。通常标本发生溶血的原因：注射器、针头及容器含水分；采血部位用酒精消毒后，酒精未完全挥发；反复皮下穿刺，甚至刺破血管；抽血速度过快，产生血泡并将泡沫注入容器；振荡血液时过于剧烈；两次抽血注入同一试管内等。因此，取血时最好使用一次性注射器，采血部位皮肤消毒后应等皮肤干燥后再抽血，抽血后取下针头，将血液顺管壁缓慢注入试管内，避免将泡沫或用力将血液急速推入容器造成溶血。
6 病人和标本不符

望阅读愉快~~O(∩_∩)O~~

满意就请及时采纳我吧！如有问题请继续追问哦！

4. 血标本被污染的原因

标本采集是医务人员的日常工作之一，采集行为直接影响检验科收到的标本状态，进而影响医生对病情的判断和疾病诊治。血标本采集的正确与否及其质量好坏直接影响到检验结果的准确性,进而影响临床诊断。一个有价值的检验结果需要护理人员、患者、检验人员多方面的密切配合才能完成。

现就护理人员在采取血标本中常遇到的不合格标本原因及对策做总结：

血液标本不合格原因

1、标本凝块:

2、标本量少：

3、采血管出现错误: 在采血过程中使用了不正确的采血管；

4、真空采血管出现破损；

5、血样送检时间超时。未按照相关规定将采集到的血样送到相应检验室；

6、血样标本信息存在错误或者没有检测的项目要求；

7、没有采集到血样标本；

8、出现溶血问题，如重度或者重度溶血；

9、严重脂血，主要呈现为牛奶状；

10、采集到的血样标本受到污染，如运送中没有加盖导致被其他的标本污染。

检验科室凡是遇到上述任何的一个情况都将血标本判定为不合格标本，会立即致电病区护士，核对患者的信息、不合格原因等，并在做出判断后要求临床护士重新采血。

在临床工作中，遇到最多的不合格标本还是溶血和凝血。凝血分为肉眼不容易发现的血凝块及是液凝固两种类型。导致出现这两种现象的原因主要是：在对患者进行抽血的时候不顺利，抽血时间过长。这样操作带来的问题是血液可能在针管当中已经出现凝固；或在血液被注入到针管当中的时候，没有立即轻摇，从而也可能造成部分的血液凝集；或在进行摇晃的时候，摇晃不均匀，时间不够充分，使得血液没有和抗凝剂充分混合；其次就是采血量不足或者是操作不规范的问题。

标本溶血原因

1、病人血管不充盈，用止血带时间过长，捆扎过紧，并反复用力拍打穿刺部位，引起血管内溶血；

2、穿刺不顺利，针尖在静脉中反复探寻，损伤组织过多，造成血肿而溶血：

3、混匀抗凝管时用力过猛或送检时振荡过大；

4、从已有血肿的静脉采血，血样可能含有已溶血的细胞；

5、未使用采血针，而使用了一次性注射器，抽血过快，采血后将血从注射器注入试管过猛，血细胞受外力而溶血；

6、标本量不足，血液和抗凝剂比例失调，由于渗透压的改变发生溶血；

7、静脉穿刺处用酒精或碘伏消毒，酒精或碘伏未干即开始采血；

8、注射器或盛血容器不干燥或容器污染；

9、注射器和针头连接不紧，采血时空气进入，产生气泡，发生溶血；

10、用真空管采血却未抽足量，即真空管内还残留部分负压，引起标本溶血。

5. 动物染色体标本中造成染色体标本制作不佳的可能原因有哪些

1)动物的选择,一般用小鼠,其繁殖能力强,易于饲养.我们常用的是它们的骨髓细胞和精巢,因其分裂指数较高,不用体外培养就可以得到分裂中期的细胞.
2)秋水仙素用量要注意,太多或处理时间过长,会导致染色体的过分凝缩或着丝点裂解,最终会引起染色体形态不正常,甚至被破坏或溶解.
3) 低渗处理很关键.低渗液的量、处理时间均与细胞的数量有关.低渗过度,细胞会破裂；低渗不足则染色体在一起,分散不开.
4) 离心速度或离心时间也能影响染色体标本的制备.离心速度过大或离心时间过长,则会引起细胞破裂；反之,离心速度过小或离心时间过短,则细胞沉降不下来,则会引起大量细胞的丢失.
5) 固定液要随用随配,固定彻底后再打散细胞团块,否则细胞容易破碎,染色体分散亦受到影响.
6) 载玻片要预冷.冷却不够,则会影响染色体的附着和铺展.
7) 用吸管吹散细胞时用力必须尽量轻柔,用力过大则会造成细胞破裂,而染色体也会弥散在溶液中,在随后的离心中将会丢失.
8) 滴片时的高度很重要,高度过低细胞不会破裂；过高则染色体过于分散甚至丢失,无法辨别出染色体的准确数量.

6. 下列抽样调查选取样本的方法是否合适若不合适，请说明理由。

（1）不合适，调查的范围较小，没有代表性和广泛性，失去了调查的意义

7. 如何正确留取痰标本

痰是诊断某些呼吸道疾病的依据之一。通过观察痰的性状可以大致上辨别疾病的类型,对痰液进行培养还能发现致病微生物以及药物敏感性，对治疗疾病有帮助。查痰如此重要，因此病人应掌握正确的留痰方法，否则将会直接影响痰检结果
正确留取痰标本的方法是：
1.病人留痰标本前用清水漱口，以清除口腔内的食物残渣及部分杂菌
；
2.做深呼吸数次后，收腹用力咳出来自支气管深部的脓样或粘液样痰液，痰量不少于3毫升，避免留取唾液或鼻咽部分泌物；
3.留痰标本要使用专用的痰盒，并及时送实验室检查，以免干燥妨碍检查；
4.在治疗期留痰培养标本时，应在停药48小时后留取
。
5.无痰或少痰者应使用浓盐水刺激排痰；或拍背咳嗽使痰液排出。
分享到:
相关新闻最新科普知识睡眠呼吸暂停有哪些危害？睡眠呼吸暂停有什么症状？阻塞性睡眠呼吸暂停有哪些病因？什么是睡眠呼吸暂停？如何防范秋季呼吸道疾病

8. 痰培养标本怎么留才正确

留痰培养标本：

1、取痰前一天要多喝水，有条件的可以做雾化使痰液稀释，易于排出。

2、在早晨空腹祛痰比较好。先用清水漱一下口，保持口腔卫生，有假牙的需要取下来，然后用力咳嗽，最好是深咳，将呼吸系统深部的痰液吐出来，吐到容器内，容器一定是无菌的干燥的，然后收取痰液后拧紧，立即送到检验科。

3、用气管穿刺法来进行对厌氧菌的培养。

4、痰液留取应立即送去检查，避免污染。在室温下不应该超过两小时，另外如果没有条件立即送检，应在4度的冰箱内保存24小时内处理。

5、当检查结核分枝杆菌时，为了提高阳性率应收集24小时内各时间段的痰液。

(8)标本留取方法不正确的原因分析扩展阅读：

痰培养的临床意义：

该项检查适用于各种不明原因的呼吸道感染疾病。

痰液培养出致病菌后，进行菌种鉴定，可得出相应的病原菌。常见的致病菌有：

1、革兰阳性菌：肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、结核分枝杆菌、放线菌、奴卡菌、厌氧球菌、白喉棒状杆菌等。

2、革兰阴性菌：卡他布兰汉菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎克雷伯菌、大肠杆菌、假单胞菌、军团菌等。

3、培养分离出一些真菌，有助于真菌性感染的诊断。

4、做病毒分离：可分离到某些病毒，如分离到禽流感病毒H5N1，则可诊断为禽流感。

9. 制作植物标本实验成败关键原因分析

做植物标本实验成败，关键原因分析呃呃，实验原因关键失败是因为你那个脱水的时间不够，然后压制他干燥的时间