❶ 跑dna電泳出現拖尾現象,不知道為何
你的情況，應該從以下兩個方面找原因：
1.一般來說，marker除了能檢測DNA的分子質量外，還可以側面反應你的膠是否制的成功，從你的圖上看，膠的問題比較大一些，膠的濃度和你溶膠的時間以及最後的溶解情況都有一些關系，跑過pcr後分子大小等出現了變化，也可能是受到了空氣的污染等，為了檢測你的maker是否有問題，可以在同塊膠上點上別的MAKER，或者請別人幫你制膠後再跑一下。
2.鎂離子的濃度問題，鎂離子濃度不合適本身就很容易拖尾，前8個樣在跑PCR的時候都加了鎂離子，而總DNA沒有，這也是他們的區別，也可以從這點找找原因。
❷ 酶切電泳條帶拖尾的原因
建議你做如下改進：
1.原始質粒上樣2ul,電泳檢測,確定質粒質量沒問題；
2.所有酶切體系均改為10ul,其中質粒2ul,酶0.1ul （雙酶切時另一種酶也加0.1ul ）,buffer終濃度為 1×,剩下為去離子水.酶切時間為4小時左右.
3.電泳用的凝膠最好為新鮮配製的,濃度視質粒大小而定,一般為1%；
電泳的緩沖液最好也是新鮮配製的,電泳電壓適當.
1KB的條帶拖尾嚴重,可能是凝膠不新鮮,或者是電泳時電壓過高,或者是酶切時間過長.上述建議中已經給出解決方法.
至於你說的奇怪現象,可能質粒已經降解,也可能是酶切過久導致降解,也可能是槍頭或者離心管等器材污染,總之保證一切是新鮮的,再做一次.
❸ 如何解決PCR產物電泳拖尾現象
這個可能與DNA降解有關,導致了DNA不純 所以會拖尾
解決方案 加電壓 跑得快 避免與手接觸 要去除核酸酶 加些SDS吧
這只是理論看法 未經實踐 希望對你有幫助 如果有條件 就試一試 記得告訴我結果 謝啦^ ^
❹ 總DNA電泳拖尾嚴重是什麼原因
現在實驗室大多用的是提取試劑盒，如果自製溶液鹼性過強會有可能出現拖尾現象，蛋白沉降步驟不完全也會有可能導致基因組dna降解出現拖尾現象。類似於溶液方面的問題一般比較容易排除，而且比較容易改正。
電泳結果拖尾大部分原因與實驗操作有關，在加入鹼性溶液裂解細胞後操作需要輕柔，靜置時間不宜過長，劇烈震盪以及靜置時間過長均可導致質粒dna斷裂，電泳結果中出現拖尾現象。
有什麼問題可以繼續追問，歡迎交流。
❺ 電泳DNA時,拖尾現象很嚴重,造成這種現象的原因有哪些
電泳出現拖尾現象,英文成為smear,就是彌散.其原因,主要從以下兩個方面考慮：
1、PCR產物自身原因：
往往由於酶量過多或酶的質量差,dNTP濃度過高,Mg2+濃度過高,退火溫度過低,循環次數過多,而造成PCR的非特異性產物 過多.
對策：①減少Taq酶的量,或調換另一來源的酶.②減少dNTP的濃度.③適當降低Mg2+濃度.④增加模板量,減少引物的用量 ,減少循環次數,提高退火溫度.
2、電泳體系的問題：
（1）電泳緩沖液TAE或者TBE的污染,建議更換緩沖液.（2）上樣時樣品漂了,建議增加上樣緩沖液的用量,以及小心加樣.（3）電壓太高.（4）適當把你的膠的濃度加大.（根據你的片斷大小而定）（5）觀察你的marker是否也存在拖尾現象,作為對照.
❻ PCR產物跑電泳時發生拖尾，這是什麼原因造成的
PCR產物電泳拖尾，可能有如下原因： a.模板不純。b.退火溫度偏低。c.酶量過多，dNTP、Mg2+濃度偏高。d.循環次數過多。 解決辦法：a.純化模板。b.適當提高退火溫度。c.降低酶量，適當降低dNTP和鎂離子的濃度。d.減少循環次數
❼ 電泳圖如下，marker有拖尾現象，是怎麼回事
很可能是膠沒煮好！煮的時候要沸騰三次，搖勻，不然膠的密度不均一。
電壓，電壓過高也會拖帶
可以適當提高電泳槽裡面的緩沖液濃度。
如果還是不好，可以換一個稍微寬一點的梳子，一般效果會好很多。
❽ 如何防止DNA電泳拖尾
PCR擴增有時出現塗抹帶或片狀帶或地毯樣帶。
其原因往往由於酶量過多或酶的質量差或酶的專一性不夠，DNA模板量過大，dNTP濃度過高，Mg2 濃度過高，退火溫度過低，循環次數過多，模板長於3kd所引起。
減少酶量（一般以2單位Taq DNA聚合酶為基點，分梯度上下調一調，其他酶也差不多如此濃度，可以參考說明書）；加強DNA聚合酶的專一性或調換另一來源的專一性更好的DNA聚合酶。
增加DNA聚合酶的專一性。
（1）改用專一性更強的DNA聚合酶，或者使用兩種不同的DNA聚合酶，減低酶量或調換另一來源的專一性高的酶。更換DNA聚合酶時，酶量不要太大，以免出現特異性擴增。 （2）酶制劑中的甘油可能也是干擾因素。可以加入反應體系之前用超濾去除酶制劑中的甘油，若此操作引起酶的濃度過高，可以適當加雙蒸餾水稀釋。
（3）為了加強Taq DNA聚合酶的專一性。 的專一性，可在反應體系中加入：1-1.5mol/L的甜菜鹼或者5%的DMSO可以提高PCR擴增效率，兩者可以增加Taq DNA聚合酶的穩定性。
適當減少dNTP的濃度；減少dNTP的濃度一般需要與降低Mg2 濃度同方向偶聯進行，但是不必按同樣的比例。
適當降低Mg2 濃 度，可以採用梯度遞減方式，以每次0.5mol/L遞減，但是Mg2 的終濃度不要低於1.0mol/L。
縮短PCR反應的退火溫度時間或調高復性溫度。沒有重新設計引物之前，不要大范圍地變動反應體系的復性溫度，要在引物的Tm少5-10度的范圍內變動。如果出現非特異性擴增，則在引物的Tm少5-10度的范圍內把PCR反應的復性溫度提高1-3度。
使用梯度降低PCR。在以基因組DNA為模板進行PCR擴增時，非特異性擴增較多，這時，最初的退火溫度選用比Tm高5-10度。然後每隔1個循環，退火溫度降低1-2度，直至到達正常的Tm附近的退火溫度。
採用使用專一性更強的梯度降低PCR、熱啟動PCR和巢式PCR。使用熱啟動模式。使用熱啟動時可以購買商用的PCR熱啟動酶，也可以用石蠟隔離模式。巢式PCR也有現成的試劑盒可以購買。
保證PCR反應的DNA模板的質量，要用電泳檢測一下分子量和純度，質量不好則要重新提取和純化DNA模板；適當增加DNA模板量，減少循環次數。
以上措施都不行時，最後就只能重新設計引物，加強引物的專一性。
適當減少DNA模板量。
適當減少循環次數，一般也就循環25次就差不多了。
❾ 這是我的pcr產物凝膠電泳圖，哪位大神可以解答一下，為什麼會出現前後拖帶怎樣解決這個問題
正常現象，沒必要大驚小怪，你如果是用基因組作為模板的話，出現拖尾是很正常的現象，畢竟基因組序列那麼大，出現一些與引物部分序列互補的序列區間也是可能的，如果是其他的DNA作為模板，則有可能是你的模板不純造成的，另外體系中有些物質，比如SDS也可能顯示一些假帶，造成判帶困擾，所以你可以無視這種現象，只關心你的目的條帶是否擴增出來即可