❶ 跑dna电泳出现拖尾现象,不知道为何
你的情况，应该从以下两个方面找原因：
1.一般来说，marker除了能检测DNA的分子质量外，还可以侧面反应你的胶是否制的成功，从你的图上看，胶的问题比较大一些，胶的浓度和你溶胶的时间以及最后的溶解情况都有一些关系，跑过pcr后分子大小等出现了变化，也可能是受到了空气的污染等，为了检测你的maker是否有问题，可以在同块胶上点上别的MAKER，或者请别人帮你制胶后再跑一下。
2.镁离子的浓度问题，镁离子浓度不合适本身就很容易拖尾，前8个样在跑PCR的时候都加了镁离子，而总DNA没有，这也是他们的区别，也可以从这点找找原因。
❷ 酶切电泳条带拖尾的原因
建议你做如下改进：
1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题；
2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul （双酶切时另一种酶也加0.1ul ）,buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.
3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1%；
电泳的缓冲液最好也是新鲜配制的,电泳电压适当.
1KB的条带拖尾严重,可能是凝胶不新鲜,或者是电泳时电压过高,或者是酶切时间过长.上述建议中已经给出解决方法.
至于你说的奇怪现象,可能质粒已经降解,也可能是酶切过久导致降解,也可能是枪头或者离心管等器材污染,总之保证一切是新鲜的,再做一次.
❸ 如何解决PCR产物电泳拖尾现象
这个可能与DNA降解有关,导致了DNA不纯 所以会拖尾
解决方案 加电压 跑得快 避免与手接触 要去除核酸酶 加些SDS吧
这只是理论看法 未经实践 希望对你有帮助 如果有条件 就试一试 记得告诉我结果 谢啦^ ^
❹ 总DNA电泳拖尾严重是什么原因
现在实验室大多用的是提取试剂盒，如果自制溶液碱性过强会有可能出现拖尾现象，蛋白沉降步骤不完全也会有可能导致基因组dna降解出现拖尾现象。类似于溶液方面的问题一般比较容易排除，而且比较容易改正。
电泳结果拖尾大部分原因与实验操作有关，在加入碱性溶液裂解细胞后操作需要轻柔，静置时间不宜过长，剧烈震荡以及静置时间过长均可导致质粒dna断裂，电泳结果中出现拖尾现象。
有什么问题可以继续追问，欢迎交流。
❺ 电泳DNA时,拖尾现象很严重,造成这种现象的原因有哪些
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：
1、PCR产物自身原因：
往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.
对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.③适当降低Mg2+浓度.④增加模板量,减少引物的用量 ,减少循环次数,提高退火温度.
2、电泳体系的问题：
（1）电泳缓冲液TAE或者TBE的污染,建议更换缓冲液.（2）上样时样品漂了,建议增加上样缓冲液的用量,以及小心加样.（3）电压太高.（4）适当把你的胶的浓度加大.（根据你的片断大小而定）（5）观察你的marker是否也存在拖尾现象,作为对照.
❻ PCR产物跑电泳时发生拖尾，这是什么原因造成的
PCR产物电泳拖尾，可能有如下原因： a.模板不纯。b.退火温度偏低。c.酶量过多，dNTP、Mg2+浓度偏高。d.循环次数过多。 解决办法：a.纯化模板。b.适当提高退火温度。c.降低酶量，适当降低dNTP和镁离子的浓度。d.减少循环次数
❼ 电泳图如下，marker有拖尾现象，是怎么回事
很可能是胶没煮好！煮的时候要沸腾三次，摇匀，不然胶的密度不均一。
电压，电压过高也会拖带
可以适当提高电泳槽里面的缓冲液浓度。
如果还是不好，可以换一个稍微宽一点的梳子，一般效果会好很多。
❽ 如何防止DNA电泳拖尾
PCR扩增有时出现涂抹带或片状带或地毯样带。
其原因往往由于酶量过多或酶的质量差或酶的专一性不够，DNA模板量过大，dNTP浓度过高，Mg2 浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，模板长于3kd所引起。
减少酶量（一般以2单位Taq DNA聚合酶为基点，分梯度上下调一调，其他酶也差不多如此浓度，可以参考说明书）；加强DNA聚合酶的专一性或调换另一来源的专一性更好的DNA聚合酶。
增加DNA聚合酶的专一性。
（1）改用专一性更强的DNA聚合酶，或者使用两种不同的DNA聚合酶，减低酶量或调换另一来源的专一性高的酶。更换DNA聚合酶时，酶量不要太大，以免出现特异性扩增。 （2）酶制剂中的甘油可能也是干扰因素。可以加入反应体系之前用超滤去除酶制剂中的甘油，若此操作引起酶的浓度过高，可以适当加双蒸馏水稀释。
（3）为了加强Taq DNA聚合酶的专一性。 的专一性，可在反应体系中加入：1-1.5mol/L的甜菜碱或者5%的DMSO可以提高PCR扩增效率，两者可以增加Taq DNA聚合酶的稳定性。
适当减少dNTP的浓度；减少dNTP的浓度一般需要与降低Mg2 浓度同方向偶联进行，但是不必按同样的比例。
适当降低Mg2 浓 度，可以采用梯度递减方式，以每次0.5mol/L递减，但是Mg2 的终浓度不要低于1.0mol/L。
缩短PCR反应的退火温度时间或调高复性温度。没有重新设计引物之前，不要大范围地变动反应体系的复性温度，要在引物的Tm少5-10度的范围内变动。如果出现非特异性扩增，则在引物的Tm少5-10度的范围内把PCR反应的复性温度提高1-3度。
使用梯度降低PCR。在以基因组DNA为模板进行PCR扩增时，非特异性扩增较多，这时，最初的退火温度选用比Tm高5-10度。然后每隔1个循环，退火温度降低1-2度，直至到达正常的Tm附近的退火温度。
采用使用专一性更强的梯度降低PCR、热启动PCR和巢式PCR。使用热启动模式。使用热启动时可以购买商用的PCR热启动酶，也可以用石蜡隔离模式。巢式PCR也有现成的试剂盒可以购买。
保证PCR反应的DNA模板的质量，要用电泳检测一下分子量和纯度，质量不好则要重新提取和纯化DNA模板；适当增加DNA模板量，减少循环次数。
以上措施都不行时，最后就只能重新设计引物，加强引物的专一性。
适当减少DNA模板量。
适当减少循环次数，一般也就循环25次就差不多了。
❾ 这是我的pcr产物凝胶电泳图，哪位大神可以解答一下，为什么会出现前后拖带怎样解决这个问题
正常现象，没必要大惊小怪，你如果是用基因组作为模板的话，出现拖尾是很正常的现象，毕竟基因组序列那么大，出现一些与引物部分序列互补的序列区间也是可能的，如果是其他的DNA作为模板，则有可能是你的模板不纯造成的，另外体系中有些物质，比如SDS也可能显示一些假带，造成判带困扰，所以你可以无视这种现象，只关心你的目的条带是否扩增出来即可