病理常用的組織製片方法

⑴ 病理切片的病理切片的製作

1．取材
（1）材料新鮮：取材組織愈新鮮愈好，人體組織一般在離體後，動物組織在處死後迅速固定，以保證原有的形態學結構。
（2）組織塊的大小：所取組織塊較理想的體積為2.0cm×2.0cm×0.3cm，以使固定液能迅速而均勻地滲入組織內部，但根據製片材料和目的不同，組織塊的較理想體積也不同，如製作病理外檢、科研切片，其組織塊可以薄取0.1～0.2cm即可，這樣可以縮短固定脫水透明的時間，若製作教學切片厚取0.3 ～0.5cm，這樣可以同一蠟塊製作出較多的教學切片。
（3）勿擠壓組織塊: 切取組織塊用的刀剪要鋒利，切割時不可來回銼動。夾取組織時切勿過緊，以免因擠壓而使組織、細胞變形。
（4）規范取材部位: 要准確地按解剖部位取材，病理標本取材按照各病變部位、性質的不同，根據要求規范化取材。
（5）選好組織塊的切面:根據各器官的組織結構，決定其切面的走向。縱切或橫切往往是顯示組織形態結構的關鍵，如長管狀器官以橫切為好。
（6）保持材料的清潔:組織塊上如有血液、污物、粘液、食物、糞便等，可用水沖洗干凈後再放入固定液中。
（7）保持組織的原有形態:新鮮組織固定後，或多或少會產生收縮現象，有時甚至完全變形。為此可將組織展平，以盡可能維持原形。
2．固定
（1）小塊組織固定法：這是最常用的方法，從人體或動物體取下的小塊組織，須立即置入液態固定劑中進行固定，通常，標本與固定液的比例為1:4～20，但組織塊不宜過大過厚，否則固定液不能迅速滲透。故取組織塊的大小一般為2.0cm×2.0cm×0.3cm。
（2）注射、灌注固定法：某些組織塊由於體積過大或固定液極難滲入內部，或需要對整個臟器或整個動物體進行固定。這時宜採用注射固定或灌注固定法。將固定液注入血管，經血管分支到達整個組織和全身，從而得到充分的固定。
（3）蒸汽固定法：比較小而厚的標本，可採用鋨酸或甲醛蒸汽固定法。如血液塗片，則應在血片未乾燥前採用鋨酸或甲醛蒸汽接觸固定。
最常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。
3．脫水透明
標本經過固定和沖洗後，組織中含有較多的水分，必須將組織塊內的水分置換出來，這一過程叫做脫水。無論是用石蠟切片，還是用火棉膠切片，都必須除去組織中所含水分，因含水組織與石蠟、火棉膠等包埋材料不相容，常用的脫水劑為一系列不同濃度的乙醇。
脫水的步驟是：80%、90%、95%、100%各種濃度乙醇2小時，此過程可用脫水機自控完成。
丙酮也是一種脫水能力很強的脫水劑，但因其脫水能力很強，對組織有劇烈收縮作用，在製作科研、教學切片時一般不用該試劑。因乙醇、丙酮等不溶於石蠟，還要經過一個能溶於石蠟的溶劑替代過程稱為透明。常用的透明劑有二甲苯、三氯甲烷、水楊酸甲酯等。
4．浸蠟、包埋
（1）使石蠟浸入組織中，取代組織中含有的透明劑。
（2）包埋：將浸蠟後的組織置於融化的固體石蠟中，石蠟凝固後，組織即被包在其中，稱蠟塊，此過程稱為包埋。
5．切片和貼片
（1）修整蠟塊：可視其組織的大小，在組織邊緣約0.1～0.2cm處，切去余蠟部分，否則易造成組織皺縮不平。
（2）准備好切片用具：切片刀、毛筆、眼科鑷子（彎）、漂烘溫控儀
（3）安裝蠟塊：將修好的蠟塊安裝在金屬或木製持蠟器上。
（4）安裝切片刀：將切片刀安裝在切片機的刀台上，把刀台上的緊固螺絲旋緊，使切片時不產生振動，能保持一定的切片厚度。
（5）切片的厚度：切片機的厚度調節器上刻有0～50μm或0～25μm，可任意選擇其厚度，石蠟切片的厚度一般在4～6μm。
（6）切片
（7）鋪片：用眼科鑷子鑷起蠟帶輕輕平鋪在40～45℃的水面上，借水的張力和水的溫度，將略皺的蠟帶自然展平。
（8）貼片、烘片：待切片在恆溫水面上充分展平後，將蠟片撈到載玻片的中段處傾去載玻片上的余水，置入60～65℃恆溫箱內或切片漂烘溫控儀的烘箱內烤片15～30分鍾，脫去溶化組織間隙的石蠟。
6．染色和封片
常用的染色方法是蘇木素-伊紅（Hematoxylin-Eosin）染色法，簡稱H.E染色法。這種方法對任何固定液固定的組織和應用各種包埋法的切片均可使用。蘇木素是一種鹼性染料,可使組織中的嗜鹼性物質染成藍色，如細胞核中的染色質等；伊紅是一種酸性染料，可使組織中的嗜酸性物質染成紅色，如多數細胞的胞質、核仁等在H.E染色的切片中均呈紅色。
H.E染色程序如下:脫蠟、脫苯、復水、染色、脫水、透明、封固
常規蘇木素染色中的對比染色是用伊紅,近年來在英、美國家的一些實驗室則採用焰紅（phloxine）,此外也有用桔黃G（OrangeG）、比布里希猩紅(Biebrich scarlet)、波爾多紅(Bordeaux red)等作為對比染色。伊紅為染胞質、膠原纖維、肌纖維、嗜酸性顆粒等常用的染料。

⑵ 如何製作石蠟切片

[1]請教丁老師如何製作皮膚的石蠟切片

一 皮膚組織標本製作及常用染色方法概述
皮膚組織標本常規以福爾馬林固定，石蠟包埋，蘇木素－伊紅(Hematoxylin eosin HE)染色。皮膚組織的製片及染色技術與普通病理相同：標本固定－水洗－硬化、脫水－透明－包埋－切片－染色。但皮膚組織亦有其自身特點，如表皮細胞層次多，纖維及脂肪組織豐富，在取材及固定方面有其特殊性，製片及染色過程也應注意其特點，以提高製片質量。
二 取材
a取材要足夠大，應包括一小部分正常組織，以便與病理組織對照，因許多皮膚病的典型病變在真皮深層或皮下組織，故還應包括皮下組織,
b多數情況下應選擇充分發展的損害，早期損害常為非特異性，晚期損害的病變大都處於恢復或變性、壞死階段，充分發展的損害容易找到典型病變而明確診斷，還應盡量選擇損害的活動邊緣部分，中央部分可能病變已趨向於消退而找不出典型病變。對於水皰性、膿皰性以及含有病原體的損害應取早期損害，否則，若發生繼發性改變(如變性、再生或繼發性感染)可能隱蔽了重要病變的組織形態，同時，很難辨別病變形成的過程,
c盡量避免切除腋窩或腹股溝等部位皮膚組織，因該處皮膚由於磨擦，搔抓等常有萎縮,
d如疑有血管性或血液性疾患，最好不要取下肢標本，因下肢常有血液停滯或其它肢端血管病，皮內可能有含鐵血黃素沉著,
e對某些腫瘤，如角化棘皮瘤，Spitz痣等，應盡可能將腫瘤全部切除，若不能全部切除，則最好自腫瘤中心至邊緣取一楔形標本，以供組織學檢查。
三 固定
切下皮膚愈早固定愈好，夏天超過4小時，冬天超過24小時，標本體積就要收縮變形或發生自溶。常用固定液為10％中性福爾馬林，其總體積應為組織塊總體積的7～10倍，用10％福爾馬林固定小塊組織(1.5 cm×1.5 cm×0.2cm)數小時即可，時間稍長對製片影響不大，隨著溫度的增高可縮短固定時間，對固定時間過長的標本，可在製作切片時，用流水沖洗24小時，甚至48小時，以免影響染色效果。
四 脫水、包埋、切片及染色
皮膚組織常用酒精脫水、二甲苯透明、石蠟包埋，切片厚度一般為5μm～7μm，與普通病理切片操作程序相同。HE染色法方便、經濟，結果穩定，95％以上的組織切片都可以在HE染色下作出診斷，是皮膚組織病理最常用的方法。

[2]http://www.pathology-home.com/html/pathology/20051207_1.asp
自己點進去看吧，太多了 復制不了

⑶ 幾種生物製片方法各適宜觀察什麼生物樣品

裝片：可觀察從生物體上取下來的細胞（如口腔上皮細胞、洋蔥鱗片葉內表皮細胞）或個體微小的生物如衣藻、水綿、水螅、青黴結構
切片：用於觀察用特製刀具把生物體的組織或礦物切成的薄片,如葉片切片（觀察葉片結構氣孔等結構）
切片：用於觀察懸液狀態的生物材料,如人的血液血細胞的觀察

⑷ 病理技術的細胞製片

細胞製片包括各種來源的樣本的制備，比如宮頸脫落細胞樣本、呼吸系統樣本、體腔液樣本、腦脊液脫落細胞樣本、消化道脫落細胞樣本等的制備；細胞固定；細胞染色等。

⑸ 病理學研究最常用的方法

是屍體剖檢。

對死亡者的遺體進行病理剖檢（屍檢）是病理學的基本研究方法之一。屍體剖檢（autopsy）不僅可以直接觀察疾病的病理改變，從而明確對疾病的診斷，查明死亡原因，幫助臨床探討、驗證診斷和治療是否正確、恰當，以總結經驗，提高臨床工作的質量。

而且還能及時發現和確診某些傳染病、地方病、流行病、為防治措施提供依據，同時還可通過大量屍檢積累常見病、多發病、以及其他疾病的人體病理材料，為研究這些疾病的病理和防治措施，為發展病理學作貢獻。

顯然，屍檢是研究疾病的極其重要的方法和手段，人體病理材料則是研究疾病的最為寶貴的材料。

(5)病理常用的組織製片方法擴展閱讀：

病理學與臨床醫學之間的密切聯系，明顯地在對疾病的研究和診斷上。臨床醫學除運用各種臨床診察、檢驗、治療等方法對疾病進行診治外，往往還必須藉助於病理學的研究方法如活體組織檢查、屍體剖檢以及動物實驗等來對疾病進行觀察研究，提高臨床工作的水平。

病理學則除進行實驗研究（實驗病理學）外，也必須密切聯系臨床，直接從患病機體去研究疾病，否則也不利於病理學本身的發展。

病理學長期以來被形象地喻為「橋梁學科」，這充分表明了它在醫學中，特別是在臨床醫學中佔有不可替代的重要地位。其理由主要是由病理學的性質和任務所決定的。

⑹ 解離組織製片的常用方法有哪些

解離組織製片的常用方法有：質量分數15%的鹽酸和體積分數95%的酒精，鹽酸能殺死細胞，使其停止在各個分裂時期；還能溶解細胞之間的中膠層（破壞胞間連絲）。

保護組織位於植物的植物體幼嫩的根、莖、葉、花、果實的表面、直接接觸外界環境的細胞層，而輸導組織則是貫穿於植物體的根莖葉等器官為他們提供營養，掐去一根枝條的頂端就不會向上長了，因為植物生長靠的是細胞分裂，頂端的分生組織被破壞。

解離就是用要葯液

使組織的細胞相互分離開來，便於最後製片時能被壓成一薄層進行顯微觀察。解離液中酒精的作用是迅速殺死細胞，固定細胞的分裂相（將洋蔥根尖剪下後，如果不立即投入固定液中將其殺死並令其各種細胞結構凝固，那麼，整個根尖將一個分裂期細胞也找不到！）；而鹽酸能溶解果膠，從而使洋蔥細胞的細胞壁軟化，並使細胞間的中膠層物質溶解，從而達到分離細胞的目的。

⑺ 請教各種永久玻片的做法!

石蠟切片（paraffin section） 組織學常規製片技術中最為廣泛應用的方法。石蠟切片不僅用於觀察正常細胞組織的形態結構，也是病理學和法醫學等學科用以研究、觀察及判斷細胞組織的形態變化的主要方法，而且也已相當廣泛地用於其他許多學科領域的研究中。教學中，光鏡下觀察切片標本多數是石蠟切片法制備的。活的細胞或組織多為無色透明，各種組織間和細胞內各種結構之間均缺乏反差，在一般光鏡下不易清楚區別出；組織離開機體後很快就會死亡和產生組織腐敗，失去原有正常結構，因此，組織要經固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細胞組織死亡，而能清晰辨認其形態結構。

石蠟切片製作基本技術 石蠟切片法包括取材、固定、洗滌和脫水、透明、浸蠟、包埋、切片與粘片、脫蠟、染色、脫水、透明、封片等步驟。一般的組織從取材固定到封片製成玻片標本需要數日，但標本可以長期保存使用，為永久性顯微玻片標本。

1.取材 應根據要求選取材料來源及部位。例如植物細胞有絲分裂多選取洋蔥根尖，細胞分裂快又便於切取；豬的肝小葉邊界清晰明確；耳蝸以豚鼠的內耳易於定位和剝離。材料必須新鮮，擱置時間過久則產生蛋白質分解變性，導致細胞自溶及細菌的滋生，而不能反映組織活體時的形態結構。

2.固定 用適當的化學葯液——固定液浸漬切成小塊的新鮮材料，迅速凝固或沉澱細胞和組織中的物質成分、終止細胞的一切代謝過程、防止細胞自溶或組織變化，盡可能保持其活體時的結構。固定能使組織硬化，有利於切片的進行，而且也有媒浸作用，有利於組織著色。固定液的種類很多，其對組織的硬化收縮程度以及組織內蛋白質、脂肪、糖類等物質的作用各不相同。例如純酒精可固定肝糖而能溶解脂肪，甲醛能固定一般組織，但溶解肝糖和色素。固定液可分為單一固定液及混合固定液。前者有甲醛（蟻醛、福爾馬林）、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、鋨酸（四氧化鋨）、重鉻酸鉀及苦味酸等，單一固定液不能固定細胞中的所有成分；混合固定液可以互補不足，常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液（配方見有關技術書籍）。因此，應根據所要顯示的內容來選擇適宜的固定液。10％福爾馬林（4％甲醛）或10％磷酸緩沖福爾馬林是病理切片常規使用的固定液，不僅適用於常規HE（蘇木精-伊紅）染色，還可以用於組織學有關的其他技術的切片染色。固定液的用量通常為材料塊的20倍左右，固定時間則根據材料塊的大小及松密程度以及固定液的穿透速度而定，可以從1小時至數天，通常為數小時至24小時。

3.洗滌與脫水 固定後的組織材料需除去留在組織內的固定液及其結晶沉澱，否則會影響以後的染色效果。多數用流水沖洗；使用含有苦味酸的固定液固定的則需用酒精多次浸洗；如果組織經酒精或酒精混合液固定，則不必洗滌，可直接進行脫水。固定後或洗滌後的組織內充滿水分，如不除去水分就無法進行以後的透明、浸蠟與包埋，因為透明劑多數是苯類，苯類和石蠟均不能與水相融合，水分不脫盡，苯類不能浸入。酒精為常用脫水劑，它既能與水相混合，又能與透明劑相混，為了減少組織材料的急劇收縮，應使用從低濃度到高濃度遞增的順序進行，通常從30％或50％酒精開始，經70％、85％、95％直至純酒精（無水乙醇），每次時間為1～數小時，如不能及時進行各級脫水，材料可以放在70％酒精中保存，因高濃度酒精易使組織收縮硬化，不宜處理過久。正丁醇、叔丁醇、丙酮及二氧陸環等也可做脫水劑。

4.透明 純酒精不能與石蠟相溶，還需用能與酒精和石蠟相溶的媒浸液，替換出組織內的酒精。材料塊在這類媒浸液中浸漬，出現透明狀態，此液即稱透明劑，透明劑浸漬過程稱透明。常用的透明劑有二甲苯、苯、氯仿、正丁醇等，各種透明劑均是石蠟的溶劑。通常組織先經純酒精和透明劑各半的混合液浸漬1～2小時，再轉入純透明劑中浸漬。透明劑的浸漬時間則要根據組織材料塊大小及屬於囊腔抑或實質器官而定。如果透明時間過短，則透明不徹底，石蠟難於浸入組織；透明時間過長，則組織硬化變脆，就不易切出完整切片，最長為數小時。

5.浸蠟與包埋 用石蠟取代透明劑，使石蠟浸入組織而起支持作用。通常先把組織材料塊放在熔化的石蠟和二甲苯的等量混合液浸漬1～2小時，再先後移入2個熔化的石蠟液中浸漬3小時左右，浸蠟應在高於石蠟熔點3℃左右的溫箱中進行，以利石蠟浸入組織內。浸蠟後的組織材料塊放在裝有蠟液的容器中（擺好在蠟中的位置），待蠟液表層凝固即迅速放入冷水中冷卻，即做成含有組織塊的蠟塊。容器可用光亮且厚的紙折疊成紙盒或金屬包埋框盒。如果包埋的組織塊數量多，應進行編號，以免差錯。石蠟熔化後應在蠟箱內過濾後使用，以免因含雜質而影響切片質量，且可能損傷切片刀。通常石蠟採用熔點為56～58℃或60～62℃兩種，可根據季節及操作環境溫度來選用。

6.切片 包埋好的蠟塊用刀片修成規整的方形或長方形，以少許熱蠟液將其底部迅速貼附於小木塊上，夾在輪轉式切片機的蠟塊鉗內，使蠟塊切面與切片刀刃平行，旋緊。切片刀的銳利與否、蠟塊硬度適當都直接影響切片質量，可用熱水或冷水等方法適當改變蠟塊硬度。通常切片厚度為4～7微米，切出一片接一片的蠟帶，用毛筆輕托輕放在紙上。

7.貼片與烤片 用粘附劑將展平的蠟片牢附於載玻片上，以免在以後的脫蠟、水化及染色等步驟中二者滑脫開。粘附劑是蛋白甘油。首先在潔凈的載玻片上塗抹薄層蛋白甘油，再將一定長度蠟帶（連續切片）或用刀片斷開成單個蠟片於溫水（45℃左右）中展平後，撈至玻片上鋪正，或直接滴兩滴蒸餾水於載玻片上，再把蠟片放於水滴上，略加溫使蠟片鋪展，最後用濾紙吸除多餘水分，將載玻片放入45℃溫箱中乾燥，也可在37℃溫箱中乾燥，但需適當延長時間。

8.切片脫蠟及水化 乾燥後的切片需脫蠟及水化才能在水溶性染液中進行染色。用二甲苯脫蠟，再逐級經純酒精及梯度酒精直至蒸餾水。如果染料配製於酒精中，則將切片移至與酒精近似濃度時，即可染色。

9.染色 染色的目的是使細胞組織內的不同結構呈現不同的顏色以便於觀察。未經染色的細胞組織其折光率相似，不易辨認。經染色可顯示細胞內不同的細胞器及內含物以及不同類型的細胞組織。染色劑種類繁多，應根據觀察要求及研究內容採用不同的染色劑及染色方法，還要注意選用適宜的固定劑才能取得滿意的結果。經典的蘇木精（Hematoxylin）和伊紅（曙紅，Eosin）染色法是組織學標本及病理切片標本的常規染色，簡稱HE染色。經HE染色後，細胞核被蘇木精染成紫藍色，多數細胞質及非細胞成分被伊紅染成粉紅色。由於蘇木精是帶陽離子的染料，染液呈鹼性，核內染色質及胞質內核糖體等物質對這種染料有親和性，稱嗜鹼性；而帶陰離子的染料伊紅配製的染液呈酸性，對這種染料的親和性，稱嗜酸性。有時不同的組織結構還需要用特殊的染料及染色方法加以顯示，稱特殊染色。有些細胞組織經硝酸銀浸潤後，可使溶液中銀離子還原成金屬銀或銀粒附著在細胞組織上，呈棕黑色，這種性質稱親銀性，而有些細胞組織本身不能使硝酸銀的銀離子還原成金屬銀，還需加還原劑才能將銀離子還原，稱嗜銀性。

10.切片脫水、透明和封片 染色後的切片尚不能在顯微鏡下觀察，需經梯度酒精脫水，在95％及純酒精中的時間可適當加長以保證脫水徹底；如染液為酒精配製，則應縮短在酒精中的時間，以免脫色。二甲苯透明後，迅速擦去材料周圍多餘液體，滴加適量（1～2滴）中性樹膠，再將潔凈蓋玻片傾斜放下，以免出現氣泡，封片後即製成永久性玻片標本，在光鏡下可長期反復觀察。注意有些染料需特定廠家生產的產品。根據各種染色方法、組織類別及切片厚度，掌握適宜的染色時間，才能達到較好的染色效果。

石蠟製片程序及環節繁多，需數日才能完成1個周期，但切片可長期保存，供教學、科研及病理診斷及復察，並可利用蠟塊作其他項目的回顧性研究。病理常規製片過程中已簡化了一些細的環節或縮短了部分處理時間以適應臨床需要（可縮短至2天）。雖然冰凍切片大大快於石蠟切片，但所顯示的形態結構卻不如前者，因此病理醫生最後還需要根據石蠟切片作出准確診斷。近些年來，在病理常規製片過程中採用了微波技術，從而大大縮短了製片過程，而且對形態結構並沒有影響。微波是一種波長很短、頻率卻很高的高頻電磁波〔波長為1米 ～1毫米，頻率為300兆赫（MHz）～300千兆赫（GHz）〕。組織經微波輻射後加速組織內部分子的高速運動，以使液體的運輸加快，增加彌散、滲透和交換效率，從而加速組織的固定、脫水、透明、包埋和染色各個環節。例如常規福爾馬林固定需數小時～1天，而且能引起組織收縮及某些抗原成分不同程度的受到破壞，微波固定僅需1～2分鍾，且可減少抗原的丟失和損害。選擇適當的檔次（功率）、輻射時間和溫度是極為重要的。目前微波技術的應用在國內尚處於起步階段，許多技術應用環節尚需進一步摸索。

⑻ 組織學教學標本常用的製片技術是

課堂學習過程中基本組織形式，就是指教師採用一定的方式，運用一定的協調機制等來組織而形成的課堂學習活動的過程模式。例如有：

（一）環套式的組織形式

指通過教師編制一整套的、系統的、層層遞進式的問題（問題情境），以此來引導學生不斷地去探索、發現，直至問題的解決。

例如，在課堂學習兩位數乘法（例題：17×32）是，教師就可以通過下列一組問題來引導學生思考：①17×32表示什麼？能否用算式表示？②第一步先算什麼？為什麼先算17×30？③再算什麼？兩個結果怎樣相加？④怎樣用豎式相加？為什麼這樣對？找到什麼規律？

（二）迴旋式的組織形式

指通過教師編制的一個引導學生對問題情境的探索、思考與發現的系統，來組織學生的學習。並且這個系統不是直線式的，而是一個循環式的迴路系統。在這個系統中，「情景①」和「情景②」之間構成一個不斷比較、探索、思考和修正的迴路，而「情景②」與「情景③」又構成了一個不斷比較、探索、思考和修正的迴路。如此往復不斷地通過嘗試、比較、修正，來逼近問題目標。

⑼ 一種組織切片的預糊化澱粉包埋劑及製片方法介紹有哪些

一種用於組織切片的預糊化澱粉包埋劑及製片法屬病理診斷的組織切片領域，尤適於對各種生物體液的組織切片。其特徵在於所說的包埋劑是澱粉:麵粉、綠豆粉、玉米粉、高粱粉等製作的預糊化澱粉。本發明使用澱粉包埋劑，原料來源廣泛、價錢便宜、操作簡單，其目的是能收集體液中的細胞進行切片檢查，並克服塑料包埋劑存在的缺點。

⑽ 製片法有哪幾種

你問的是TCT製片方法嗎？
TCT製片方法 最常用主要有手工法、TCT膜式法和離心沉降法三種。
手工法是婦科醫生用取樣器在患者宮頸口取脫落細胞，然後打開康乃欣生產的液基細胞處理試劑盒，取出液基細胞保存液，旋開液基細胞保存液蓋，將病理取樣置液基細胞保存液中，蓋上液基細胞標本保存液蓋，將它放在液基細胞震盪儀上震盪5分鍾，目的是打散宮頸脫落細胞，使脫落細胞均勻分布在保存液中。取出液基細胞試劑盒中一次性吸管，在震盪後的液基細胞保存液中吸取0.2-0.39毫升標本，平鋪在病理載玻片上，將載玻片平放在工作台上，等待自然干後，進行染色（HE染色或巴氏染色），然後封片，鏡檢。
TCT膜式法，早在19世紀中旬，這種方法是發達國家在宮頸癌篩查常用的一種方法，在改革開放後引入我國。TCT膜式法製片過程，是通過TCT膜式機製片。TCT膜式機的原理是通過負壓和正壓將附在TCT膜管上的細胞吹在載玻片上的製片方式。這種TCT製片方式簡單，快捷，缺陷是TCT膜管容易吹裂，製片一次一個。TCT膜管目前市場上很多廠家，國外有美國、英國、德國進口的，國內也有很多廠家。質量最可靠的是美國的。英國、德國的TCT膜管易裂，膜網不均，國產的質量更次，會導致病理脫落細胞片中細胞量少，嚴重降低宮頸癌陽性篩查率。

離心沉降法，首先打開康乃欣液基細胞處理試劑盒，拿出液基細胞標本保存液、宮頸脫落細胞取樣器、一次性吸管等。將脫落細胞取樣器取樣，旋開液基細胞標本保存液蓋，放入宮頸脫落細胞，蓋上蓋。將液基細胞標本保存液放置液基細胞震盪儀上震盪4分鍾，使液基細胞處理液充分處理病理標本，充分打散宮頸脫落細胞。用一次吸管吸取液基細胞標本處理液1ml-2.5ml放入專供製片夾中。將編好號碼的製片夾放入康乃欣液基細胞製片機（也叫康乃欣液基細胞薄層製片機），將液基細胞製片機通電，時間調到4-5分鍾，轉速設為1200-1500轉/秒。啟動液基細胞製片機，聽到「咔」的一聲。告知液基製片已經製作完成，最後染色鏡檢。