① 傳統的植物提取方式有那些優缺點新興的植物提取方式有那些
傳統提取方法:
1.溶劑法(包括浸漬法、滲漉法、煎煮法、迴流提取法、連續迴流提取法等)
優點:方法簡便、設備要求低、成本低廉。
缺點:提取效率低、資源浪費嚴重。
2.水蒸氣蒸餾法
優點:可以把極低含量的揮發性有機物質濃縮數千倍。
缺點:提取不完全。
3.升華法
優點:簡單易行。
缺點:升華不完全,產率低,有時還伴有分解現象。
新興的植物提取方法:
1.超臨界流體萃取
2.微波提取
3.超聲波提取
4.酶法提取
5.半仿生提取法
6.破碎提取法
7.空氣爆破法
8.亞臨界流體萃取
② 植物色素的提取方法有哪些
我是從網上找來的,不知道樓主喜歡不喜歡!看看吧!
葉綠素的提取通常利用葉綠素溶於有機溶劑的原理
最常用的是丙酮
葉片中的幾種葉綠素在丙酮中的溶解度非常大
丙酮有一個物理性質就是沸點低
溶解後加熱丙酮就揮發了
葉綠素就留下來了
工業上提取葉綠素就是這個原理
制備線粒體時,可將組織勻漿液懸浮在懸浮介質中進行差速離心法進行分離。在一定的離心場中(選用離心機的一定轉速),大小不一的顆粒沉降速度取決於它的密度、半徑和懸浮介質的粘度。在一個均勻懸浮介質中離心一定時間,組織勻漿中的各種細胞器及其它內含物由於沉降速度不同而停留在高低不同的位置。依次增加離心力和離心時間,就能夠使這些顆粒按其大小、輕重分批沉降在離心管底部,從而分批收集。細胞器中最先沉澱的是細胞核,其次是線粒體,其它更輕的細胞器和大分子可依次再分離。
③ 植物蛋白質的提取方法
植物蛋白質的提取方法基本上有這幾種:鹽析法、有機溶劑法和等電點法。
1、鹽析法
原理:鹽析法是指在葯物溶液中加入大量的無機鹽,使某些高分子物質的溶解度降低沉澱析出,而與其他成分分離的方法。鹽析法主要用於蛋白質的分離純化。常作鹽析的無機鹽有硫酸鈉、硫酸鎂、硫酸銨等。
2、有機溶劑法
原理:機溶劑引起蛋白質沉澱的主要原因是加入有機溶劑使水溶液的介電常數降低,因而增加了兩個相反電荷基團之間的吸引力,促進了蛋白質分子的聚集和沉澱。有機溶劑引起蛋白質沉澱的另一種解釋認為與鹽析相似,有機溶劑與蛋白質爭奪水化水,致使蛋白質脫除水化膜,而易於聚集形成沉澱 。
3、等電點法
原理:在等電點時,蛋白質分子以兩性離子形式存在,其分子凈電荷為零(即正負電荷相等),此時蛋白質分子顆粒在溶液中因沒有相同電荷的相互排斥,分子相互之間的作用力減弱,其顆粒極易碰撞、凝聚而產生沉澱,所以蛋白質在等電點時,其溶解度最小,最易形成沉澱物。
等電點時的許多物理性質如黏度、膨脹性、滲透壓等都變小,從而有利於懸浮液的過濾。
④ 植物RNA提取方法有哪些
植物提取物的提取方法
目前提取植物提取物常用的方法有溶劑提取法、超聲波提取法、微波提取法和酶提取法,而超臨界流體萃取法、微波輔助提取法等則作為新的提取技術被廣泛使用。
溶劑提取法
溶劑提取法是用溶劑從固體原料中提取有效成分,所用的溶劑必須具備與所提取的溶質互溶的特性。將植物材料粉碎後,放入適合的容器內,加入數倍量溶劑,可採用浸漬、滲漉、煎煮、迴流和連續提取法進行提取。巴科的丹參提取物就是用溶劑提取法提取的,精油類物質就是用溶劑提取法。
在溶劑提取法的提取工藝過程中,溶劑的濃度、料液比、提取溫度、提取的時間會直接影響有效成分的提取率。Cristina Juan等人通過溶劑萃取法提取大米中的赭麴黴素A,用熒光探測法和液相色譜法確定OTA的含量,研究表明在最適宜的料液比、提取溫度和提取時間的情況下,提取物OTA含量最高為4.17ng/g。Monte D. Holt等採用溶劑萃取法從生的和熟的小麥種提取烷基間苯二酚,實驗表明採用溶劑萃取法能夠節約提取時間。
超聲波提取法
超聲波提取是利用超聲波產生的強烈振動和空化效應加速植物細胞內物質的釋放、擴散並溶解進入溶劑中,同時可以保持被提取物質的結構和生物活性不發生變化。超聲波提取原理主要為物理過程,是近年來逐漸受到重視的一個較新的提取方法。對多數成分來說,超聲波提取方法較常規的溶劑提取能大幅地縮短提取時問,消耗溶劑少,浸出率高,因此具有較高的提取效率。
在超聲波法提取工藝過程中,溶劑的選擇和濃度、料液比、提取溫度、提取的時間會直接影響提取率。Ling Zhou等人利用超聲波提取法提取五味子,主要研究了超聲提取率的影響因素,實驗研究得出,提取率隨著溫度的升高而升高,隨著功率的增大而增大。Hong Van Le等利用超聲波提取櫻桃中的維生素E和酚類化合物,主要比較了超聲提取法和酶提取法在提取時間、提取率上的差異,實驗結果表明超聲波提取法時間上比酶提取縮短了6倍,超聲波提取的提取率是酶提取的2~3倍。鍾愛國等利用超聲波萃取鮮竹葉中葉綠素的方法,用分光光度計來定量測定所萃取的葉綠素的含量。結果表明:與常用的有機溶劑提取法相比,超聲波萃取法不僅萃取率高、速度快、效率高,而且是室溫提取,無需加熱,節約能源。
⑤ 植物中色素的提取方法有哪些
1、溶解法,用酒精等溶劑水浴加熱,可提取葉綠素、花青素等.
2、壓榨法,機械粉碎後壓榨過濾
3、兩者綜合.
⑥ 植物提取液的製作方法
介紹幾種簡單的萃取方法:
①普通香草萃取液的製作方法
萃取液可以將各種香草的香味和水溶性有效成分萃取出來,可以應用於化妝水和化妝棉。
用料:乾燥香草或中葯5g——10g,精製水適量的水200ml(避免使用硬水)。
製作方法:
1將蒸餾水入鍋燒至沸騰,放入香草輕輕攪拌
2為了防止有效成分散發關火後蓋上鍋蓋蒸10——15分鍾
中途不要打開鍋蓋
3冷卻後過濾。放入容器中保存在冰箱中。保存期約1——2周。
②酒精香草萃取液的製作方法
用料:酒精100-150ml,乾燥香草或中葯 10-20g,30-40度以上的無臭蒸餾酒(燒酒或白乾或無水酒精等)。
無水酒精要用精製水稀釋到30-40度。30ml無水酒精加入70ml蒸餾水
浸出要點:
除了花葉等柔軟細碎的材料之外,堅硬的果實、枝、樹脂等,酒精濃度提高,萃取時間延長。
製作方法:
1將香草和中葯放入瓶中,倒入酒精直到沒過草葯位置。
2蓋上蓋子放在陰涼的地方2-3周,為了促進萃取完全每天搖晃1-2回。
3過濾。
4放入遮光容器中保存在陰涼處。保存期限約1年。
③西洋醋香草萃取液的製作方法
西洋醋 200ml
乾燥香草(薰衣草)10-20g
比浸出液和浸出油的有效成分濃度低,溫和的使用觸感,推薦給對酒精過敏的人。可以用於化妝水、沐浴乳、料理等。
合適的醋:蘋果醋、葡萄酒醋
製作方法:
1.將香草放入瓶中,將醋倒入淹沒香草位置。
瓶子不要太大,以免接觸空氣的面積過大。
2.蓋上蓋子放置於溫暖的地方1-2周。每天搖晃1-2回。
3.過濾。
4.放入避光容器中至於陰涼處保存。保存期限約3-6個月。
⑦ 請問如何提取植物精華有多少種方法
有好多種方法可以提取。如:迴流法,水煮法等等。或者直接用超臨界二氧化碳萃取設備直接接取。另外還有一些土辦法,比如直接攪拌也可以,只是提取的比例比較低。。。聽說現在又出來一種超聲提取法,不知道是不是真的。
⑧ 目前常用的植物蛋白提取方法有哪些
一、植物組織蛋白質提取方法
1、根據樣品重量(1g樣品加入3.5ml提取液,可根據材料不同適當加入),准備提取液放在冰上.
2、把樣品放在研缽中用液氮研磨,研磨後加入提取液中在冰上靜置(3-4小時).
3、用離心機離心8000rpm40min4℃或11100rpm20min4℃
4、提取上清液,樣品制備完成.
蛋白質提取液:300ml
1、1Mtris-HCl(PH8) 45ml
2、甘油(Glycerol)75ml
3、聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinylpolypyrrordone)6g
這種方法針對SDS-PAGE,垂直板電泳!
二、植物組織蛋白質提取方法
氯醋酸—丙酮沉澱法
1、在液氮中研磨葉片
2、加入樣品體積3倍的提取液在-20℃的條件下過夜,然後離心(4℃8000rpm以上1小時)棄上清.
3、加入等體積的冰浴丙酮(含0.07%的β-巰基乙醇),搖勻後離心(4℃8000rpm以上1小時),然後真空乾燥沉澱,備用.
4、上樣前加入裂解液,室溫放置30分鍾,使蛋白充分溶於裂解液中,然後離心(15℃8000rpm以上1小時或更長時間以沒有沉澱為標准),可臨時保存在4℃待用.
5、用Brandford法定量蛋白,然後可分裝放入-80℃備用.
葯品:提取液:含10%TCA和0.07%的β-巰基乙醇的丙酮.裂解液:2.7g尿素0.2gCHAPS溶於3ml滅菌的去離子水中(終體積為5ml),使用前再加入1M的DTT65ul/ml.
這種方法針對雙向電泳,雜質少,離子濃度小的特點!當然單向電泳也同樣適用,只是電泳的條帶會減少!
三、組織:腸黏膜
目的:WESTERN BLOT檢測凋亡相關蛋白的表達
應用TRIPURE提取蛋白質步驟:
含蛋白質上清液中加入異丙醇:(1.5ml每1mlTRIPURE用量)
倒轉混勻,置室溫10min
離心:12000 g,10min,4度,棄上清
加入0.3M鹽酸胍/95%乙醇:(2ml每1mlTRIPURE用量)
振盪,置室溫20min
離心:7500g,5 min,4度,棄上清
重復0.3M鹽酸胍/95%乙醇步2次
沉澱中加入100%乙醇 2ml
充分振盪混勻,置室溫20 min
離心:7500g,5min,4度,棄上清吹乾沉澱
1%SDS溶解沉澱
離心:10000g,10min,4度
取上清-20度保存(或可直接用於WESTERN BLOT)
存在的問題:加入1%SDS後沉澱不溶解,還是很大的一塊,4度離心後又多了白色沉定,SDS結晶?測濃度,含量才1mg/ml左右.
解決:提蛋白試劑盒,另外組織大小適中,要碎,立即加2X BUFFER,然後煮5-10分鍾,效果很好的.
四、植物材料:水稻苗,葉鞘,根
1、200毫克樣品置於冰上磨碎
2、加lysis buffer,離心,10000rpm,4度,5min取上清
3、重復離心5min
lysis buffer:urea np-40 ampholine 2-me pvp-40
五、蛋白質樣品制備
秧苗蛋白質樣品的提取按Davermal等(1986)的方法進行.
100mg材料剪碎後加入10mgPVP-40(聚乙烯吡咯烷酮)及少量石英砂,用液氮研磨成粉,加入1.5 ml 10% 三氯乙酸(丙酮配製,含10mM即0.07%β-巰基乙醇),混勻,-20℃沉澱1小時,4℃,15000 r/min離心15 min,棄上清,沉澱復溶於1.5ml冷丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇),再於-20℃沉澱1小時,同上離心棄上清,(有必要再用80%丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇所得沉澱低溫冷凍真空抽干.
按每mg乾粉加入20μl(可調) UKS液[9.5 M尿素,5mM碳酸鉀,1.25%SDS,0.5%DTT(二硫蘇糖醇),2% Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc,pH3.5-10),6% Triton X-100],37℃溫育30min,期間攪動幾次,28度 (溫度低,高濃度的尿素會讓溶液結冰)16000 r/min離心15 min,離心力越大時間長一點越好!上清即可上樣電泳.或者-70度保存
六、植物根中蛋白質的抽取
(1) sample,液氮研磨
(2) 裝1.5 ml centrifuge 用tube
(3) 加 1M KH2PO4 K2HPO4 700 ul
(4) 12000 rpm,4度,10-15minite
(5) 取上層液,蛋白質就在裡面
⑨ 天然植物提取酶有哪些方法
首先,破碎植物細胞.
然後,根據所需要的酶的結構和溶解性質,選擇適當的溶劑提取.為了提高提取率,防止酶變性失 活,在提取過程中要注意控制好溫度,pH值等提取條件.
第三,離心分離、過濾與膜分離、沉澱分離、層析分離、電泳分離、萃取分離、結晶等.
具體的設備要根據你的實驗材料來定哦,少量的話用一般的實驗室玻璃儀器就夠用了,比如說,冷凝迴流管,分液漏斗,至於設備的話就不清楚了哦~