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检测植物程序性死亡的染色方法

发布时间:2025-08-09 04:57:53

❶ PCDPCD-细胞程序性死亡

PCD-细胞程序性死亡(programmed cell death, PCD),也被称作凋亡(apoptosis),是一种细胞在特定条件下主动选择的有序死亡方式。这种死亡过程是由基因调控触发的,旨在保护细胞免受内外环境因子的损害。PCD涉及分子机制的诱导激活和基因编程,旨在去除体内非必需的细胞或即将发生特化的细胞。这一过程发生在生物生长发育过程中的特定时间,特定的组织部位,涉及到某一个特定的细胞类型,并且这一过程是可以被检测到的。PCD现象广泛存在于动植物有机体中,目前对于PCD的研究,动物比植物方面的研究更为广泛深入。

PCD的认识和研究最初是从观察两栖类动物的变态现象开始的。后来,人们发现PCD普遍发生在无脊椎和脊椎动物体中,例如昆虫变态反应中无用细胞的去除、蝌蚪尾巴的消失、脊椎动物和人类非功能性腺的退化以及皮肤表面细胞的死亡等等。自从Kerr于1972年首次对动物细胞凋亡进行了详细描述后,动物细胞凋亡的研究取得了长足的进展。随着研究的深入,科学家发现PCD现象也在植物中广泛存在,如维管束分化过程中导管细胞的死亡;根尖伸长过程中根冠细胞的死亡;雌配子体发育过程中大孢子的退化死亡;花药发育中绒毡层细胞的死亡;植物超敏反应中叶片细胞的死亡等等。

大量研究表明,发生PCD的细胞一般具有典型的形态和生化特征,包括细胞收缩、核浓缩、染色质边缘化、核DNA被剪切成寡聚核小体大小的片段并最终被膜包围形成凋亡小体(apoptosis body)等。此外,细胞凋亡的检测方法也很多,如显微镜观察、TUNEL检测、彗星电泳、DNA-Ladder等。

❷ 最常用的细胞凋亡检测方法是什么

细胞死亡的方式主要有两种,包括 细胞坏死(necrosis)和细胞凋亡(apoptosis) 。细胞坏死是早已被认识到的细胞死亡方式,而细胞凋亡是近年来逐渐被认识且越来越受到重视的细胞死亡方式。两种死亡方式最重要的区别是细胞坏死会释放出细胞内溶物, 引起炎性反应 ,而细胞凋亡不会暴露细胞内溶物,一般被吞噬细胞吞噬清除, 不引起炎性反应 。

细胞凋亡,也称 细胞程序性死亡,是指在一定的生理或者病理条件下,细胞主动的、高度有序的、自己结束其生命的过程 。细胞凋亡是生物体中一种普遍存在的现象,胚胎形成、个体发育、衰老和损伤细胞的清除等都与细胞凋亡密切相关。细胞凋亡在免疫学中也非常重要,如T细胞在胸腺内发育的过程,经过阴性选择和阳性选择后,95%的胸腺细胞发生凋亡,只有5%的胸腺细胞发育为成熟T细胞进入外周。

检测细胞凋亡的方法很多,如电子显微镜或者光学显微镜下的形态学观察、细胞DNA提取物的DNA梯状带电泳实验等。而流式细胞术是非常重要的检测细胞凋亡的方法,不仅可以定性,也可以定量。流式细胞术检测细胞凋亡的方法也有很多,其中最重要是annexinV/PI双染色法。其他的还有SYTO/PI双染色法、细胞DNA含量分析法、线粒体损伤检测法、活化的caspase-3检测法、FLICA标记法、甲酰胺诱导ssDNA单抗检测法、TUNEL法等。今天主要介绍一下annexinV/PI双染色法。

Annexin V/PI双染色法

正常细胞膜的磷脂分布是不对称的,活细胞中 磷脂酰丝氨酸(phosphatidylserine,PS) 位于 细胞膜的内表面 ,细胞凋亡时,细胞膜发生变化, PS从细胞膜的内表面翻转到细胞膜的外表 面。 annexinV是一种对PS有高度亲和力的、钙依赖性的磷脂结合蛋白 ,annexinV可以特异性地识别凋亡细胞表面的PS,而 活细胞的PS位于细胞膜的内表面 ,无法与annexinV特异性结合。所以可以用FITC偶联的annexinV鉴别凋亡细胞和活细胞。

坏死细胞的PS也会从细胞膜的内表面翻转到细胞膜的外表面,annexinV也能识别坏死细胞表面的PS,所以 annexinV无法区分坏死细胞和凋亡细胞 。而 PI染料能够与细胞内的DNA结合 , 区分坏死细胞和活细胞 。凋亡细胞和活细胞的细胞膜仍然完整,PI染料无法自由通过细胞膜进入细胞内与DNA结合,所以 PI染料无法标记凋亡细胞和活细胞 ,而PI染料却能够通过坏死细胞的细胞膜与细胞内的DNA结合,坏死细胞内PI染料被488nm激光激发后会发射红荧光,被FL2或FL3通道接收。所以 annexinV和PI同时使用,就可以区分活细胞、凋亡细胞和坏死细胞 ,这就是annexinV/PI双染色法检测细胞凋亡的原理。

标记方法与常规标记荧光抗体的方能一样:加入适量的FITC­annexinV和PI,4℃静置30min即可。注意 标记PI的方法与PI染色检测细胞内DNA含量的方法不同,不需提前固定细胞 ,因为本方法标记PI是为了检测细胞膜的通透性从而鉴别细胞是活细胞还是死细胞,而用PI检测DNA含量时必须先破坏活细胞的细胞膜的完整性使PI进入细胞内与DNA结合。

下图是用annexinV/PI双染色法检测细胞凋亡得到的一张散点图。图中大致可以分为三大细胞群:右上象限的细胞表型为annexinV+PI+,代表的是坏死细胞;右下象限的细胞表型为annexinV+PI-,代表的是凋亡细胞;左下象限的细胞表型为annexinV-PI-,代表的是活细胞。通过annexin V/PI双染色法可以非常明确地区分活细胞、凋亡细胞和坏死细胞,并且可以定量分析各自所占的比例。

例:

下图引自[1],作者用annexinV/PI双染色法检测肺癌细胞系“H1299”和“A549”细胞凋亡,证明肺癌细胞表面的TLR4受体与LPS结合后,能够增强其抵抗TNFα和TRAIL诱导的凋亡。

从图中可以看出,TRAIL诱导后,H1299肺癌细胞系的凋亡比例从3.36%上升到13.7%,被TNF-α/CHX诱导后,凋亡比例上升到16.9%;如果在诱导前加入LPS,活化H1299表面TLR4信号,被TRAIL诱导后凋亡比例只有3.8%,被TNF-α/CHX诱导后凋亡比例只有3.93%,说明H1299表面TLR4信号的活化能够促进其抵抗凋亡。另一个肺癌细胞系A549的结果也相似,LPS活化TLR4信号后,TRAIL诱导凋亡比例从16%下降到3.09%,而TNF-α/CHX诱导凋亡比例从17%下降到11.8%。

[1]Weigang He, Qiuyan Liu, Li Wang, et al. 2007. TLR4 signaling promotes immune escape ofhuman lung cancer cells by incing immunosuppressive cytokines and apoptosis resistance.Molecular Immunology, 44:2850-2859.

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