简单的血清提取方法

㈠ 血清是怎么提炼出来的

血清是血液沉降之后把血细胞分离开的上层清液。
你可以采血后把血液放进离心管中，1500~2000r/min，去上层清液就是血清！

㈡ 怎样从动物身上提取血清（常规方法）

采血（不加抗凝剂），静置直到血液凝固，然后放到37度半小时，4度过夜，效果还行

㈢ 如何在血清中提取DNA

.dna提取的几种方法
(1).浓盐法
利用rnp和dnp在电解溶液中溶解度不同，将二者分离，常用的方法是用1m
氯
纳提取化钠抽提,得到的dnp粘液与含有少量辛醇的
氯仿一起摇荡,使乳化,再离心除去蛋白质,此时蛋白质凝胶停留在水相及氯仿相中间，而dna位于上层水相中,用2倍体积95%乙醇可将dna
钠盐沉淀出来.
也可用0.15
mnacl液反复洗涤细胞破碎液除去rnp,再以1mnacl提取脱氧核糖蛋白,再按氯仿---异醇法除去蛋白.
两种方法比较,后种方法使核酸降解可能少一些.
以稀盐酸溶液提取dna
时,加入适量去污剂,如sds可有助于蛋白质与dna
的分离。在提取过程中为抑制组织中的dnase对dna
的降解作用,在氯化钠溶液中加入柠檬酸钠作为金属离子的烙合剂.通常用.15mnacl,0.015m柠檬钠,并称ssc溶液,提取dna.
（2）.阴离子去污剂法:
用sds或二甲苯酸钠等去污剂使蛋白质变性,可以直接从生物材料中提取dna
.由于细胞中dna与蛋白质之间常借静电引力或配位键结合,因为阴离子去污剂能够破坏这种价键,所以常用阴离子去污剂提取dna.
（3）.苯酚抽提法:
苯酚作为蛋白变性剂,同时抑制了dnase的降解作用.用苯酚处理匀浆液时,由于蛋白与dna
联结键已断,蛋白分子表面又含有很多极性基团与苯酚相似相溶。蛋白分子溶于酚相，而dna溶于水相。离心分层后取出水层，多次重复操作，再合并含dna
的水相，利用核酸不溶于醇的性质，用乙醇沉淀dna
。此时dna是十分粘稠的物质，可用玻璃漫漫绕成一团，取出。此法的特点是使提取的dna保持天然状态
.
（
4）.水抽提法:
利用核酸溶解于水的性质,将组织细胞破碎后,用低盐溶液除去rna，然后将沉淀溶于水中，使dna充分溶解于水中,离心后收集上清液.在上清中加入固体氯化钠调节至2.6m.加入2倍体积95%乙醇,立即用搅拌法搅出.然后分别用66%
٠80%和95%乙醇以及丙铜洗涤,最后在空气中干燥,既得dna样品.此法提取的dna中蛋白质含量较高,故一般不用.为除蛋白可将此法加以改良,在提取过程中加入sds.

㈣ 谁知道血清的分离制备方法和步骤，谢谢！

相信楼主分离血清是用于检测，而不是用于治疗。我告诉你一个简单实用的方法。我这个方法使用的器械主要就是一次性注射器。采血量看你需要的血清量来定，一般据我观察，释出的血清约为全血量的三分之一到二分之一这样。也就是你采5ml血可能得2.5ml左右的血清。当然了，必须说清楚的是能不能释出血清，因方法和猪个体的不同，成功率也就不同，我这个方法的成功率在95%左右。小猪采血在猪的前腔静脉采，直接使用注射器的原装针头，大猪则一般换12×25的针头采用耳背静脉方法采血。血采出来之后保留一段空气在注射器内，盖上针头盖，将注射器针头朝上倒立放置或呈45°角倒立放置，防止受到猛烈振动。将采好的血放置在25℃～50℃的环境中约2小时，血清就释出在上层，这时你就可以小心地将血清推出。主要注意避免采血时受到污染，避免将采得的血放置在过低的温度，温度过低很难释出血清，注意留一段空气在注射器内（留多少空气你自己看情况定，多少都要留一段），注意针口朝上。

㈤ 如何获取血清问题

serum，血清，详细资料见网络http://ke..com/view/42775.htm?fr=aladdin
先纠错，红细胞是血细胞而非生物大分子。
严格的讲，添加了抗凝剂的血液在高速离心机离心后得到的上清液为血浆而非血清，前者与后者相比含有多种凝血因子比如纤维蛋白原或纤维蛋白。离心的方法可以使血液分层，使血细胞（红细胞、白细胞）、血液中的其他成分（血小板、血浆清蛋白、球蛋白等）沉淀于管底，从而获取新鲜血浆。血清可以用离心新鲜胶冻状血凝块获得。
常用的注射器过滤器一般是0.46um和0.22um两种规格，可以过滤掉部分细菌、液体中的杂质等，理论上可以通过过滤方式得到血浆，但实际上没人这么做——因为红细胞直径为6~9um很快就能堵塞过滤器滤孔，使得过滤没法进行；手术中自体血液回输机的过滤不同于普通的注射器过滤器。
综上所述，用注射器过滤得到的血浆和离心机获得的差异不大，但注射器过滤基本上是不可能实现的。

㈥ 从血液如何获取血清

最简单的方法是 放在那里 第2天去标本分层了，上层为血清下层为细胞。

常用的方法是将标本放在试管里离心，上层是血清。

㈦ 血清RNA提取方法

血清RNA提取，biog的具体操作步骤如下： 1. 请自行准备：无水乙醇、无RNA酶1.5mL离心管。2. 取出洗涤液，按以下操作：a) 洗涤液A：21mL加入9mL无水乙醇；35mL加入15mL无水乙醇；42mL加入18mL无水乙醇。b) 洗涤液B：9mL加入21mL无水乙醇；15mL加入35mL无水乙醇；18mL加入42mL无水乙醇。c) 配制好的洗涤液如出现沉淀，可在37℃溶解，摇匀后使用。3. 取无RNA酶的1.5mL离心管，加入200μL样本，4μLRNA Carrier混合均匀，再加入300μL 裂解液及20μL 消化液，漩涡震荡10秒，充分混匀，56℃水浴10 分钟至完全裂解。4. 加入1000μL无水乙醇，轻轻颠倒混匀，如有半透明悬浮物，不影响RNA的提取与后续实验。5. 将吸附柱放入收集管内，将760μL上述溶液转入吸附柱内，静置2 分钟，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液.6. 将剩余760μL溶液转移至吸附柱内，重复步骤5。7. 将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液A至吸附柱内，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液。8. 将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液B至吸附柱内，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液。9. 将吸附柱放回收集管内，12,000 rpm 4℃离心2 分钟，离去残留的洗涤液。10. 取出吸附柱，放入新的无RNA酶的1.5 mL 离心管内，加入30-50μL 洗脱液，静置3 分钟，12,000 rpm 4℃ 离心2 分钟，收集RNA溶液。11. -70℃保存，或直接用于下一步实验。

㈧ 如何制备血清和血浆

血清和血浆均是不含细胞（包括血小板）等有形成分的血液液体部分，其主要区别是血清不含凝血因子和血小板，血浆则含有凝血因子，它们的制备方法如下：

1、血清的制备：获得的血液不能抗凝，盛于离心管或可以离心的器皿中，静置或置37℃环境中促其凝固，待血液凝固后，将其平衡后离心（一般为3000rpm，离心 5～10min），得到的上清液即为血清，可小心将上清吸出（注意切勿吸出细胞成分），分装备用。

2、血浆制备：在盛血的容器中先加人一定比例的抗凝剂（抗凝剂：血液 = 1：9，将血液加到一定量后颠倒混匀，离心（离心条件同上）后所得的上清液即为血浆。初用者最好将上清移至另一清洁容器，吸出血浆时用毛细吸管贴着液面逐渐往下吸，切忌不能吸起细胞成分。

3、富含血小板血浆制备：将获得的血液经800rpm，离心5min，其上清即为富含血小板血浆。

(8)简单的血清提取方法扩展阅读：

鉴别方法

1、血清

血液凝固析出的淡黄色透明液体。如将血液自血管内抽出，放入试管中，不加抗凝剂，则凝血反应被激活，血液迅速凝固，形成胶冻。凝血块收缩，其周围所析出之淡黄色透明液体即为血清，也可于凝血后经离心取得。在凝血过程中，纤维蛋白原转变成纤维蛋白块，所以血清中无纤维蛋白原，这一点是与血浆最大的区别。

而在凝血反应中，血小板释放出许多物质，各凝血因子也都发生了变化。这些成分都留在血清中并继续发生变化，如凝血酶原变成凝血酶，并随血清存放时间逐渐减少以至消失。这些也都是与血浆区别之处。但大量未参加凝血反应的物质则与血浆基本相同。为避免抗凝剂的干扰，血液中许多化学成分的分析，都以血清为样品。

2、血浆

血浆是血液的液体成分，血细胞悬浊于其中。人体含有2750-3300毫升血浆，约占血液总体积的55%。血浆的绝大部分是水（体积的90%），其中溶解的物质主要是血浆蛋白，还包括葡萄糖、无机盐离子、激素以及二氧化碳。血浆的主要功能是运载血细胞，同时也是运输分泌产物的主要媒介。

将新鲜血液离心，使血细胞沉降，上层淡黄色清液即是血浆。血浆与血清的区别是血清中不含纤维蛋白原等凝血因子。

参考资料来源：网络-血清

㈨ 怎么提取血清

离心就可以提取了，需要低温保存

㈩ 请教最简单的动物血血清提取方法，听老师说，将动物血放进冰箱冷冻，再让其自然融化，表面一层就是血清

不对，最简单最快的方法：取一洁净的试管或一支一次性注射器，将从动物静脉上采血3到5毫升置于试管或直接将一次性注射器抽出去一些留点空间，静置于室温或稍热一些的环境下让其自然凝固很快就会有清亮透明漂亮的血清析出。用吸管轻轻地分离于洁净的小瓶置于冰箱冷藏就行了…要是冷冻再融化就会有部分溶血的呈现出红色。
（要斜一点放置，尽量让其与空气接触面大一点，析出来的就多一点；还有一点就是要静置，不能摇晃。否则就会有溶血出现。）
鸡的血清很好分离，又快又多，牛的很慢。