小鼠常用的给药途径和方法

A. 动物学实验的实验动物常见的处理方法

一、编号
实验动物常需要标记以示区别。编号的方法很多，根据动物的种类数量和观察时间长短等因素来选择合适的标记方法。
(一)挂牌法：将号码烙压在圆形或方形金属牌上(最好用铝或不锈钢的,它可长期使用不生锈),或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带上，将此颈圈固定在动物颈部。该法适用于狗等大型动物。
(二)打号法：用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上。打号前用蘸有酒精的棉球擦净耳朵，用耳号钳刺上号码，然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。该法适用于耳朵比较大的兔、狗等动物。
(三)针刺法：用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下，在受刺部位留有一黑色标记。该法适用于大小鼠、豚鼠等。在实验动物数量少的情况下，也可用于兔、狗等动物。
(四)化学药品涂染动物被毛法：经常应用的涂染化学药品有
涂染红色：0.5%中性红或品红溶液
涂染黄色：3-5%苦味酸溶液
涂染黑色：煤焦油的酒精溶液
根据实验分组编号的需要，可用一种化学药品涂染实验动物动物背部被毛就可以。如果实验动物数量较多，则可以选择两种染料。该方法对于实验周期短的实验动物较合适，时间长了染料易退掉；对于哺乳期的子畜也不适合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法：该法适用于大、中型动物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在动物一侧或背部剪出号码，此法编号清楚可靠，但只适于短期观察。
(六)打孔或剪缺口法：可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一定的号码。如用剪子剪缺口,应在剪后用滑石粉捻一下,以免愈合后看不出来。该法可以编至1～ 9999号，此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用。
二、分组
(一)分组的原则：进行动物实验时，经常需要将选择好的实验动物按研究的需要分成若干组。动物分组应按随机分配的原则，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去，以避免各组之间的差别,影响实验结果，特别是进行准确的统计检验,必须在随机分组的基础上进行。
每组动物数量应按实验周期长短、实验类型及统计学要求而定。如果是慢性实验或需要定期处死动物进行检验的实验，就要求选较多的动物，以补足动物自然死亡和认为处死所丧失的数量，确保实验结束时有合乎统计学要求的动物数量存在。
(二)建立对照组：分组时应建立对照组。1.自身对照组：是指实验数据而言。实验动物本身在实验处理前、后两个阶段的各项相关数据就分别是对照组和实验组的实验结果，此法可排除生物间的个体差异。2.平行对照组：有正对照组和负对照组两种。给实验组动物某种处理，而给正对照组用同样方法进行处理，但并不采用实验所要求的药物或手段，负对照组则不给任何处理。3.具体分组时，应避免人为因素, 随机把所有的动物进行编号，然后令其双数为A组(实验组),单数为B组(对照组)即可或反之。如果要分若干个组时，应该用随机数字表示进行完全随机分组。 一、实验动物的除毛
在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。
(一)剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物采血或新生乳牛放血制备血清常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳缘静脉注射或尾静脉注射时常用此法。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去动物被毛的方法。如动物被毛较长，先要用剪刀将其剪短，再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除毛。本法适用于暴露外科手术区。
(四)脱毛法：脱毛法是用化学药品脱去动物被毛的方法。首先将被毛剪短，然后用棉球蘸取脱毛剂，在所需部位涂一薄层，2～3分钟后用温水洗去脱落的被毛，用纱布擦干，再涂一层油脂即可。
适用于狗等大动物的脱毛剂配方为：硫化钠10g，生石灰15g，溶于100ml水中。
适用于兔、鼠等动物的脱毛剂的配方为：1. 硫化钠3g,肥皂粉1g,淀粉7g,加适量水调成糊状；2. 硫化钠8g,淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化钠8g溶于100ml水中。
二、实验动物的给药
在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。
(一)注射给药法
1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。
2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。 如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。
4. 腹腔注射先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。
5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。
6. 淋巴囊注射蛙类常采用此法,其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。
(二)经口给药法
1. 口服法：把药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取。此法优点在于简单方便，缺点是不能保证剂量准确。一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验，制造某些与食物有关的人类疾病动物模型。
2. 灌胃法：在急性实验中,多采用灌胃法。此法剂量准确。灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。小鼠的灌胃针长约4～5cm，直径为1mm，大鼠的灌胃针长约6～8cm，直径约1.2mm。灌胃针的尖端焊有一小圆金属球，金属球为中空的。焊金属球的目的是防止针头刺入气管或损伤消化道。针头金属球端弯曲成20°左右的角度，以适应口腔、食道的生理弯曲度走向。
(三)其它途径给药方法
1. 呼吸道给药：呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气,均需要通过动物呼吸道给药。如实验时给动物乙醚作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛。
2. 皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法。如兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定的药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。
3. 脊髓腔内给药：此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液。
4. 脑内给药：此法常用于微生物学动物实验,将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变化。
5. 直肠内给药：此种方法常用于动物麻醉。兔直肠内给药时,常采用灌肠的胶皮管或用14号导尿管代替。
6. 关节腔内给药：此法常用于关节炎的动物模型复制。

B. 小白鼠常见病及用药处理方法

摘要 亲您好

C. 小鼠给药途径实验报告怎么写

一、实验材料

Mice 18-22g，2只/组鼠称、苦味酸、1mL注射器、生理盐水、小鼠灌胃针、2%ni
可刹米 四、实验步骤

1、每组取性别相同，体重相近的小鼠2只，承重、编号；

2、灌胃、皮下、腹腔给予2%ni可刹米0.2mL/10g（给药后立即放入另一个备用带
盖鼠笼，防止惊厥小鼠窜出；注意按顺序给药）；

3、给药后注意记录给药时间并仔细观察小鼠反应；

4、记录给药后立即开始计时，记录小白鼠惊厥出现的时间（潜伏期）；

5、结果 比较用三种不同给药途径给予药物小鼠反应程度以及潜伏期时间的差异。对
全班实验结果进行统计分析，得出结论并分析实验结果（对本组实验结果及全班实验结果
进行分析讨论）。
（注：数据统计时注意剔除可疑数据。）

二、实验结果及分析

p>0.05,故差异显着。以上实验结果说明，不同的给药途径ni可刹米的对小白鼠作用效果不同。

不同给药途径对药物作用影响

答：给药途径不同，药物进入血液循环的时间和剂量都不同，药物作用时间也不同。
例如：口服给药由于首过效应和吸收等因素，血药浓度曲线有较长的吸收期；而经脉注射的血药浓度曲线没有吸收期，药物瞬间达到最大浓度，且起效快。

注意事项

1、在进行实验之前，要对小白鼠进行称重，然后进行分组进行实验以使实验结果更为可靠。

2、在实验过程中，尽量减少不必要的吵闹以免惊扰小白鼠，影响实验结果。

3、数据统计时注意剔除可疑数据。若全班实验结果数据量不够，或差异性太大则将两个班或本部京江学院的结果合在一起统计。

D. 地塞米松如何注射小鼠

药理实验中小鼠给药常用并要掌握的有三个途径：1、腹腔给药 2、皮下注射给药 3、经口给药

E. 小鼠的免疫注射方法有哪些

腹腔注射、皮下注射、皮内注射、脾脏直接注射等。

F. 小鼠腹腔注射法的进针法叫什么

klenow(站内联系ta)我们一般给药都是灌胃，腹腔采用的比较少。应该是灌胃更好模拟人体内作用。sw07(站内联系ta)灌胃给药吧，腹腔注射比较少见shilehappy(站内联系ta)应该参考受试药物临床给药途径，如果临床拟给药途径为灌胃，那就灌胃，如果临床是静脉注射，那你可以腹腔注射。腹腔注射吸收快，如果制剂没有什么刺激性，注射体积适量，注射14d应该没有什么问题。alvin775(站内联系ta)一般都是灌胃给药，更能体现药物在体内的作用，腹腔注射一般用于造模victor_2006(站内联系ta)你的药物要是口服生物利用度低的话，可以试试腹腔binbinlxc(站内联系ta)灌胃和口服有什么区别啊？staffyujay(站内联系ta)腹腔注射也不能避免首过效应吧~肠系膜吸收之后还是进入下腔静脉啊~有首过效应的啊。。。建议还是灌胃把~要避免首过效应要么舌下要么静脉注射

G. 为什么做小鼠机能实验时，硫酸镁不同给药途径药物作用不一样，小鼠反应也不一样

小鼠一般有口服（灌胃）、皮下注射、静脉注射这三种方法，气体的还可以吸入。

你可以这样简单理解一下：
经过胃肠道给药，药物是需要经过肠道吸收，并经过肝脏处理，那么所给药物已经是被机体消化系统处理过，而且胃肠道也不一定能完全吸收。
经皮下注射，虽然直接进入了机体中，但是一开始也是局限于注射局部，药物要进入到循环系统来到身体各个部位（主要是靶器官），也有一个类似于吸收的过程，在此过程中也会被一定程度上处理过。
静脉注射则药物直接到达循环系统，流向全身各个部位，直接到达靶器官，药物的起效自然也是最快的。

H. 小鼠给药途径实验报告内容是什么

一、实验目的

1、研究不同剂量的xxx对小白鼠作用的效果的不同。

2、研究不同的给药途径的对小白鼠作用效果的不同。

二、实验原理

1、药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理用强弱。

2、给药途径不同，吸收速度有差别，药物反应的潜伏期和程度亦有差别，一般是腹腔大于皮下大于灌胃的药效。

实验一剂量对药物作用的影响。

三、实验材料

Mice18-22g，2只/组鼠称、xxx、1mL注射器、生理盐水、xxx0.2%、0.4%、0.8%xxx钠溶液。

四、实验步骤

1、每组取性别相同，体重相近的小鼠2只，承重、编号。

2、分别i.p0.2%、0.4%、0.8%xxx钠溶液0.1mL/10g（注意注射器勿搞混）。

3、给药后仔细观察小鼠活动情况，并记录在表1。

4、实验结束后，对全班实验结果进行统计分析，得出结论并分析实验结果（对本组实验结果及全班实验结果进行分析讨论）。

五、实验结果及分析

1、剂量对药物作用的影响（全班数据）p<0.001表示0.4%与0.8%作用维持时间有显着差异。

2、以上实验结果说明，不同剂量的xxx对小白鼠作用的效果不同。

3、本组实验结果与全班实验结果对比——潜伏期。